Помощь в учёбе, очень быстро...
Работаем вместе до победы

Оптимизация лабораторной диагностики и клинические особенности иксодовых клещевых боррелиозов, гранулоцитарного анаплазмоза человека

Диссертация: Оптимизация лабораторной диагностики и клинические особенности иксодовых клещевых боррелиозов, гранулоцитарного анаплазмоза человека
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

В этой связи, клиническая диагностика всех вышеперечисленных инфекций в остром периоде значительно затруднена, так как проявления характерного для них общеинфекционного синдрома неспецифичны и могут наблюдаться при многих других заболеваниях, не связанных с укусом клеща. Единственный патогномоничный симптом — мигрирующая эритема (МЭ), которую часто приходится дифференцировать с кожным проявлением… Читать ещё >

Содержание

  • СПИСОК СОКРАЩЕНИЙ
  • ГЛАВА 1. ОСНОВНЫЕ ЧЕРТЫ ИКСОДОВЫХ КЛЕЩЕВЫХ БОРРЕЛИОЗОВ И ГРАНУЛОЦИТАРНОГО АНАПЛАЗМОЗА ЧЕЛОВЕКА КАК НОЗОЛОГИЧЕСКИХ ФОРМ (ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ)
    • 1. 1. Краткая характеристика иксодовых клещевых боррелиозов
      • 1. 1. 1. Этиология
      • 1. 1. 2. Эпидемиология
      • 1. 1. 3. Патогенетические закономерности и основные клинические проявления
      • 1. 1. 4. Лабораторная диагностика
    • 1. 2. Краткая характеристика гранулоцитарного анаплазмоза человека в России
      • 1. 2. 1. Этиология
      • 1. 2. 2. Эпидемиология
      • 1. 2. 3. Патогенетические закономерности и основные клинические проявления
      • 1. 2. 4. Лабораторная диагностика
    • 1. 3. Особенности ИКБ/ГАЧ микст-инфекции
      • 1. 3. 1. Роль в инфекционной патологии (распространение и частота встречаемости в России)
      • 1. 3. 2. Клинические проявления и лабораторная диагностика
  • ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ
    • 2. 1. Материалы и объем исследований
    • 2. 2. Методы исследований
      • 2. 2. 1. Клинико-лабораторное обследование
      • 2. 2. 2. Серологическая диагностика
      • 2. 2. 3. Культуральный метод
      • 2. 2. 4. Полимеразная цепная реакция
      • 2. 2. 5. Статистические методы
  • ГЛАВА 3. КЛИНИЧЕСКИЕ ПРОЯВЛЕНИЯ ИКСОДОВЫХ КЛЕЩЕВЫХ БОРРЕЛИОЗОВ НА РАЗНЫХ СТАДИЯХ ЗАБОЛЕВАНИЯ
    • 3. 1. Клиническое течение локализованной стадии боррелиоза
      • 3. 1. 1. Сравнительная характеристика серонегативного и серопозитивного вариантов ИКБ (локализованная стадия)
    • 3. 2. Клиническое течение диссеминированной стадии боррелиоза
  • ГЛАВА 4. КЛИНИЧЕСКАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА ГРАНУЛОЦИТАРНОГО АНАПЛАЗМОЗА ЧЕЛОВЕКА
  • ГЛАВА 5. ОСОБЕННОСТИ КЛИНИЧЕСКОГО ТЕЧЕНИЯ АНАПЛАЗМОЗНО-БОРРЕЛИОЗНОЙ МИКСТ-ИНФЕКЦИИ
    • 5. 1. Микст-инфекция ГАЧ и ИКБ (локализованная стадия)
    • 5. 2. Микст-инфекция ГАЧ и ИКБ (диссеминированная стадия)
  • ГЛАВА 6. ОПТИМИЗАЦИЯ МЕТОДОВ ЛАБОРАТОРНОЙ ДИАГНОСТИКИ ИКБ И ГАЧ ПРИМЕНИТЕЛЬНО К РАБОТЕ ПРАКТИЧЕСКОЙ ДИАГНОСТИЧЕСКОЙ ЛАБОРАТОРИИ
    • 6. 1. Результаты лабораторной диагностики ИКБ
      • 6. 1. 1. Культуральный метод
      • 6. 1. 2. Серологическая диагностика
      • 6. 1. 3. ПЦР диагностика
      • 6. 1. 4. Сравнительная характеристика результатов ПЦР и ИФА
    • 6. 2. Результаты лабораторной диагностики ГАЧ
      • 6. 2. 1. Серологическая диагностика
      • 6. 2. 2. ПЦР диагностика
      • 6. 2. 3. Сравнительная характеристика результатов ПЦР и ИФА

Оптимизация лабораторной диагностики и клинические особенности иксодовых клещевых боррелиозов, гранулоцитарного анаплазмоза человека (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность проблемы.

На территории Предуралья, преимущественно в зоне южно-таежных и хвойно-широколиственных лесов, широко распространены очаги инфекций, передающихся иксодовыми клещами. К ним, прежде всего, относятся иксодовые клещевые боррелиозы (ИКБ) и клещевой энцефалит (КЭ), заболеваемость которыми ежегодно в несколько раз превышает общероссийские показатели (в 2011 году в Пермском крае показатели заболеваемости КЭ составляли 9,9, а ИКБ — 26,4 на 100 тыс. населения, против 2,6 и 7,0 соответственно в Российской Федерации) [18, 20].

В последние годы в Прикамье были описаны еще две нозологические формы инфекций, не диагностировавшиеся ранее, возбудителей которых также передают присасавшиеся иксодовые клещи: моноцитарный эрлихиоз человека (МЭЧ) и гранулоцитарный анаплазмоз человека (ГАЧ) [10, 12, 21, 23,43].

Ввиду сходства механизма передачи и общих переносчиков нередко происходит одновременное инфицирование сразу несколькими возбудителями «клещевых» инфекций с развитием разнообразных смешанных заболеваний [3, 38, 231]. На территории Пермского края наиболее часто (84,4%) встречается анаплазмозно-боррелиозная микст-инфекция [10].

В этой связи, клиническая диагностика всех вышеперечисленных инфекций в остром периоде значительно затруднена, так как проявления характерного для них общеинфекционного синдрома неспецифичны и могут наблюдаться при многих других заболеваниях, не связанных с укусом клеща. Единственный патогномоничный симптом — мигрирующая эритема (МЭ), которую часто приходится дифференцировать с кожным проявлением аллергической реакции или дерматитами другой этиологии, при ИКБ присутствует не всегда [18, 19]. Такие проявления анаплазмоза, как увеличение печени с одновременным повышением активности трансаминаз, нефропатия, наличие в гемограмме лейкопении, палочкоядерного сдвига лейкоцитарной формулы влево, тромбоцитопении, которые указывают на возможную вероятность этого заболевания, не являются патогномоничными [10, 122, 235]. На сегодняшний день недостаточно охарактеризован спектр клинических симптомов при «клещевых» микст-инфекциях.

Таким образом, в большинстве случаев только после лабораторного обследования удается подтвердить или установить правильный диагноз того или иного заболевания, передающегося иксодовыми клещами. Наиболее часто для их верификации, а также для суждения о динамике инфекционного процесса используются серологические методы диагностики [92, 171, 235, 253].

При наличии в лаборатории оборудования для иммуноферментного анализа (ИФА) и квалифицированного персонала особых проблем с распознаванием КЭ не возникает.

В то же время, даже при использовании высокочувствительных тест-систем ИФА для установления диагноза ИКБ в период локализованной стадии заболевания, антитела обычно обнаруживают в крови не более чем у 20−50% пациентов [253]. В некоторых случаях антительный ответ может отсутствовать на протяжении всего периода болезни и реконвалесценции [50, 135].

Апробация новых отечественных рекомбинантных тест-систем для серодиагностики ИКБ, а также МЭЧ и ГАЧ в Пермском крае в 2005 году показала их более высокую эффективность по сравнению с применявшимися ранее [11, 83, 84]. Но вследствие замедленного иммуногенеза и недостаточно высокой чувствительности тест-систем лабораторная диагностика этих инфекций требует дальнейшего совершенствования.

Культуральный метод, который считается «золотым стандартом» диагностики и в некоторых случаях применяется для подтверждения ИКБ, не может рассматриваться как способ экспресс-диагностики, так как занимает много времени (до двух недель и более). Кроме того, изоляция эрлихий и анаплазм недоступна большинству лабораторий, вследствие необходимости иметь соответствующие культуры клеток [49, 54, 55, 92, 155, 253, 257].

В связи с этим большое значение приобретает применение метода полимеразной цепной реакции (ПЦР), которая позволяет осуществлять детекцию ДНК или РНК микроорганизмов в различных биологических тканях (кровь, ликвор и др.) уже в острый период заболевания. Целесообразность использования ПЦР также обусловлена ее высокой чувствительностью и специфичностью, возможностями идентификации возбудителей заболеваний до геновидов, осуществлением лабораторной диагностики микст-инфекций и повторных заражений [126, 188, 231]. Однако, несмотря на широко известные достоинства этой реакции, ПЦР-диагностика нестандартизована, а условия ее наиболее эффективного применения нуждаются в выявлении и практической апробации на репрезентативном клиническом материале [92, 122, 253].

Чрезвычайную актуальность имеет оптимизация ПЦР для детекции возбудителей инфекций, передающихся иксодовыми клещами. Это может не только значительно улучшить их диагностику, в частности в Пермском крае, но и дать возможность описать более детально клинико-эпидемиологическую характеристику их серонегативного варианта. ПЦР может также служить сравнительным методом для более адекватной оценки чувствительности и специфичности тест-систем, применяемых в настоящее время для серологической диагностики «клещевых» инфекций.

Цель исследования — анализ особенностей клинического течения иксодовых клещевых боррелиозов и гранулоцитарного анаплазмоза человека, протекающих в виде монои микст-инфекций, оптимизация лабораторной диагностики этих заболеваний путем сочетания серологического метода с молекулярно-биологическим.

Задачи исследования:

1. Уточнить особенности клинической картины иксодовых клещевых боррелиозов и гранулоцитарного анаплазмоза человека, протекающих в виде монои микст-инфекций.

2. Охарактеризовать серонегативные варианты течения иксодовых клещевых боррелиозов, гранулоцитарного анаплазмоза человека и выявить их дифференциально-диагностические признаки.

3. Определить сроки наиболее интенсивной боррелиемии путем прямой изоляции спирохет из крови пациентов и идентифицировать возбудителей эритемной формы боррелиозов.

4. Оценить диагностическую чувствительность и выявить оптимальные сроки применения ПЦР для лабораторной диагностики иксодовых клещевых боррелиозов и гранулоцитарного анаплазмоза человека.

5. Провести сравнительный анализ результатов применения методов ИФА и ПЦР, полученных при лабораторной диагностике иксодовых клещевых боррелиозов и гранулоцитарного анаплазмоза человека.

Научная новизна исследования.

Выявлены клинические особенности монои микст-инфекций ИКБ и ГАЧ. Показано, что ГАЧ может протекать не только в манифестной, но и в инаппарантной форме. Впервые установлена возможность серонегативного течения инфекционного процесса при ГАЧ и охарактеризованы его клинические проявления. Выявлены клинические особенности серонегативного варианта эритемной формы ИКБ.

Впервые в Российской Федерации выделены и идентифицированы изоляты боррелий (В. garinii геномной подгруппы NT29) из крови больных ИКБполучены данные, характеризующие частоту изоляции возбудителя боррелиозов от пациентов с эритемной формой заболевания.

Проанализирована эффективность метода ПЦР в сравнении с серологическим методом (ИФА) при лабораторной диагностике ИКБ и ГАЧ.

Установлены оптимальные сроки применения ПЦР для подтверждения диагноза ИКБ и ГАЧ, позволяющие верифицировать эти инфекции в дебюте заболевания (до появления четких серодиагностических данных), а также при их серонегативных вариантах.

Практическая значимость.

Полученные результаты позволяют улучшить клиническую и лабораторную диагностику иксодовых клещевых боррелиозов, гранулоцитарного анаплазмоза человека и их микст-инфекции.

С помощью культурального метода установлена видовая принадлежность наиболее распространенных возбудителей эритемной формы ИКБ в Прикамье.

Выявлены клинические особенности ИКБ, ГАЧ, анаплазмозно-боррелиозной микст-инфекции и оптимальные сроки применения ПЦР (в сочетании с серологическим методом) для лабораторной верификации этих заболеваний, что способствует их ранней диагностике и своевременному назначению адекватной этиотропной терапии.

Основные положения, выносимые на защиту.

1. Клиническая картина монои микст-инфекций ИКБ и ГАЧ включает манифестные и инаппарантные формы с развитием серопозитивных и серонегативных вариантов заболевания, имеющих значимые дифференциально-диагностические признаки.

2. У пациентов с эритемной формой ИКБ, вызванной В. garinii, наблюдается слабая и непродолжительная спирохетемия.

3. Сочетание серологического и ПЦР методов улучшает лабораторную диагностику ИКБ и ГАЧ, особенно в случаях их серонегативных вариантов.

Апробация работы и публикации.

Материалы диссертации представлены на научных сессиях ГБОУ ВПО «ПГМА им. ак. Е.А. Вагнера» Минздрава России (Пермь, 2009, 2010, 2011, 2012), 10-м международном симпозиуме по инфекциям, передающимся иксодовыми клещами (Веймар, Германия, 2009), Краевой научно-практической конференции «Актуальные проблемы инфекционной патологии» (Пермь, 2010), Всероссийской научно-практической конференции с международным участием «Современные аспекты природной очаговости болезней», посвященной 90-летию ФГУН «Омский научно-исследовательский институт природноочаговых инфекций» Роспотребнадзора (Омск, 2011).

По теме диссертации опубликовано 13 научных работ, из которых 5 — в центральных изданиях, рекомендуемых ВАК.

Внедрение результатов исследования в практику.

Принципы клинической диагностики ИКБ, ГАЧ и анаплазмозно-боррелиозной инфекции, способствующие повышению уровня выявляемое&tradeэтих заболеваний внедрены в работу Пермской краевой клинической инфекционной больницы.

Материалы диссертационной работы используются в учебном процессе на кафедрах инфекционных болезней, микробиологии с курсом вирусологии и иммунологии, эпидемиологии с курсом гигиены и эпидемиологии ФПК и ППС Пермской государственной медицинской академии им. ак. Е. А. Вагнера, а также в лекционном курсе и практических занятиях с курсантами факультета усовершенствования врачей кафедры инфекционных болезней Пермской государственной медицинской академии им. ак. Е. А. Вагнера.

Объем и структура диссертации.

Диссертация изложена на 189 страницах машинописного текста и состоит из введения, обзора литературы, главы «Материалы и методы исследования», четырех глав собственных исследований, заключения, выводов, практических рекомендаций и указателя литературы, включающего 87 отечественных и 170 зарубежных источников. Диссертация иллюстрирована 18 таблицами, 28 рисунками и 11 клиническими примерами.

ВЫВОДЫ.

1. Серонегативный вариант течения ИКБ характеризуется развитием мигрирующей эритемы диаметром не менее 10 см со слабовыраженным или отсутствующим синдромом общей интоксикациипри безэритемной форме его верификация возможна только по положительным результатам ПЦР или культурального методов лабораторной диагностики.

2. ГАЧ может протекать в манифестной или инаппарантной форме с развитием серопозитивного и серонегативного вариантов, что подтверждается сочетанием результатов серодиагностики и ПЦР. Манифестная форма анаплазмоза характеризуется полиморфизмом клинических проявлений, включающих общеинфекционный синдром, поражение печени, почек, нервной системы с возможным формированием синдрома энцефалита и изменения гемограммы: лейкопения, палочкоядерный сдвиг влево, лимфопения.

3. На территории Пермского края ГАЧ почти в половине случаев протекает в сочетании с ИКБ. Микст-инфекция ГАЧ и ИКБ (локализованная стадия) в большинстве случаев (73,3%) имеет легкое течение с мигрирующей эритемой и незначительно выраженными общеинфекционным синдромом, поражениями печени, почек. При сочетании ГАЧ и ИКБ (диссеминированная стадия) чаще (71,9%) наблюдается безэритемная форма боррелиоза со среднетяжелым течением (у 96,9% таких пациентов), развитием более выраженного общеинфекционного синдрома, нарушениями со стороны сердечно-сосудистой и нервной систем, опорно-двигательного аппарата, печени, почек. Изменения гемограммы при микст-инфекции аналогичны ее показателям при моноинфекции ГАЧ.

4. Наиболее часто встречающийся возбудитель эритемной формы ИКБ в Пермском крае, как впервые установлено путем изоляции боррелий из крови пациентов, — В. %агит геномной подгруппы ЫТ29. Невысокая частота изоляции возбудителя (12,7±3,4%) в сочетании с необходимостью продолжительного инкубирования посевов делают культуральный метод мало эффективным для практики лабораторного подтверждения ИКБ. Однако изоляты боррелий — наиболее надежный материал для дальнейшего генодиагностического уточнения этиологии заболевания.

5. Методом ПНР наличие ДНК В. burgdorferi sensu lato в крови больных ИКБ, в целом, удается выявить в 24,0±2,2% случаев. Оптимальные сроки выполнения генодиагностического анализа при ИКБ — вторая неделя болезни (67,1−85,0% положительных проб), что позволяет верифицировать боррелиоз до появления четких положительных серодиагностических данных или получить лабораторное подтверждение его серонегативного варианта. При ГАЧ ПЦР-положительные результаты выявляются примерно с одинаковой частотой в разные сроки от начала заболевания. В крови больных с серологически подтвержденным анаплазмозом ДНК A. phagocytophilum удается определить в 15,7±2,5% случаев. Серологическое исследование (в частности ИФА) и анализ крови методом ПЦР следует рассматривать не как альтернативные, а как взаимодополняющие методы лабораторной диагностики.

ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ.

1. Для лабораторного подтверждения клинического диагноза ИКБ и ГАЧ серологические тесты целесообразно сочетать с методом ПЦР, особенно при их отрицательных результатах.

2. В острый период инфекционного процесса лабораторную верификацию ИКБ с помощью ПЦР рекомендуется проводить на второй неделе от начала заболевания, а ГАЧ — на протяжении всего периода болезни.

3. В регионах, где основной переносчик боррелий — таежный клещ, первичный клинический диагноз эритемной формы ИКБ следует выставлять на основании данных эпидемиологического анамнеза (присасывания клещей) и наличия мигрирующей эритемы размером не менее 10 см в диаметре.

Показать весь текст

Список литературы

  1. , А.Н. Боррелии, как вероятные антогонисты вируса клещевогоэнцефалита: паразитологический и клинический аспекты проблемы / А. Н. Алексеев, Е. В. Дубинина, М. А. Вашукова и др. // Мед. паразитол. и паразит, болезни. -2001. -№ 3. С. 3−11.
  2. , Е.С. Клещевые микст-инфекции (иксодовый клещевойборрелиоз и гранулоцитарный эрлихиоз человека) в Ярославской области / Е. С. Алешковская, H.A. Благов, Т. А. Дружинина и др. // Эпид. и инф. бол. 2008. — № 2. — С. 6−8.
  3. , Л.П. Иксодовые клещевые боррелиозы (Лаймская болезнь).
  4. Экология, клиническая картина и этиология / Л. П. Ананьева // Тер. архив. 2000. — № 5. — С. 72−78.
  5. , Л.П. Лайм-боррелиоз или иксодовые клещевые боррелиозы. 1часть: этиология, клиника, диагностика / Л. П. Ананьева // Инфекции и антимикробная терапия. 2002. — Т.4., № 2. — С. 42−45.
  6. , Л.П. Клинико-серологическое изучение болезни Лайма насеверо-западе СССР / Л. П. Ананьева, Э. И. Коренберг, И. А. Скрипникова и др. // Мед. паразитол. и паразит, болезни 1990. — № 6. -С. 28−31.
  7. , Л.П. Использование вестерн-иммуноблотинга дляопределения сывороточных IgG антител к антигенам разных геновидов боррелий / Л. П. Ананьева, В. А. Насонова, В. Г. Барскова и др. // Мед. паразитол. и паразит, болезни. — 2002. — № 2. — С. 5−7.
  8. , Л.П. Определение антиборрелиозных антител методомиммуноблотинга при боррелиозе Лайма / Л. П. Ананьева, Е. Е. Студенцов, Э. Левин // Клин. лаб. диагностика. 2002. — № 6. -С.45−47.
  9. , Л.П. Поражение суставов при болезни Лайма / Л. П. Ананьева,
  10. Е.П. Деконенко // Сов. Мед. 1988. — № 5. — С. 46−49.
  11. , М.В. Клинико-эпидемиологическая характеристикагранулоцитарного анаплазмоза человека в России (на примере Пермского края) / М. В. Афанасьева // Автореф. дис.. канд. мед. наук. -Москва,-2006.-20.
  12. , М.В. Гранулоцитарный анаплазмоз человека: особенностиклинических проявлений в России / М. В. Афанасьева, H.H. Воробьева, Э. И. Коренберг и др. // Инфекционные болезни. 2006. — Т.4., № 2. — С. 24−28.
  13. , E.H. Клиническая характеристика и факторы рискапоражения печени при Лайм-боррелиозе / E.H. Бессонова, О. М. Лесняк, С. Д. Подымова и др. // Клин, медицина. 2000. — № 4. — С. 36−40.
  14. , Е.И. Диагностика клещевых инфекций с помощью ПЦРанализа с детекцией в режиме реального времени / Е. И. Бондаренко, Д. И. Тимофеев, М. К. Иванов // Журнал «Национальные приоритеты России». -2011. № 2 (5). Специальный выпуск. — С. 150−151.
  15. , Е.А. Эрлихиозы и анаплазмозы человека в природных очагахтрансмиссивных инфекций на территории Тюменской области / Е. А. Брагина: Автореф. дисс.. канд. биол. наук. Тюмень, 2010.-21 с.
  16. , H.A. Дерматологические аспекты системного клещевогоборрелиоза (СКБ) / H.A. Ватутина, В. И. Рябов, Г. Э. Шинский и др. //
  17. Актуальные проблемы природно-очаговых инфекций. Ижевск, 1998. — С. 277−278.
  18. , H.H. Клинико-патогенетические аспекты иантибиотикопрофилактика иксодовых клещевых боррелиозов / H.H. Воробьева: Автореф. дис. д-ра мед. наук. Пермь, 1996. — 38 с.
  19. , H.H. Клиника, лечение и профилактика иксодовых клещевыхборрелиозов / H.H. Воробьева //. Пермь, 1998. — 136с.
  20. , H.H. Клиника и течение безэритемной формы иксодовыхклещевых боррелиозов / H.H. Воробьева, Г. М. Волегова, Ф. Я. Бурылов и др. // Мед. паразитология и паразитар. болезни. 1996. — № 3. — С. 1216.
  21. , H.H. Стандарты диагностики и лечения больных клещевымэнцефалитом и иксодовыми клещевыми боррелиозами / H.H. Воробьева, И. А. Главатских, O.K. Мышкина и др. // Рос. мед. журн. -2000. № 4. — С. 22−24.
  22. , H.H. Эрлихиоз в России / H.H. Воробьева, Е. В. Григорян,
  23. Э.И. Коренберг // Инфекционные болезни. Диагностика, лечение, профилактика. Тез. докл. Росс.-итал. науч. конф. СПб., 2000. — С.55.
  24. , Е.В. Первые данные о клиническом течении моноцитарногоэрлихиоза в России // Е. В. Григорян, Э. И. Коренберг, H.H. Воробьева // Эпид. и инф. бол. 2000 г. — № 6. — С. 20−23.
  25. , Е.П. Клинико-эпидемиологическая характеристикакольцевидной клещевой эритемы / Е. П. Деконенко, Ю. К. Смирнов, К. Г. Уманский // Мед. паразитол. 1986. — № 3. — С. 75−79.
  26. , Е.П. Клинические проявления и особенности Лаймборрелиоза / Е. П. Деконенко // Рос. мед. журнал. 2005. — № 1. — С. 5257.
  27. , Е.П. Поражение нервной системы при клещевойкольцевидной эритеме / Е. П. Деконенко, Ю. К. Смирнов, К. Г. Уманский // Журн. невропатол. и психиатр. 1985. — Вып. 4. — С. 539−545.
  28. , Е.П. Полиморфизм клинических проявлений при Лаймборрелиозе / Е. П. Деконенко, К. Г. Уманский, Л. В. Куприянова и др. // Клин. мед. 1991. — № 4. — С. 68−70.
  29. Деконенко, Е. П. Основные синдромы неврологических нарушений при
  30. Лайм-боррелиозе / Е. П. Деконенко, К. Г. Уманский, И. Е. Вирич и др. // Тер. архив. 1995. — № 11. — С. 52−53.
  31. C.B., Денисов A.B. Природно-очаговые инфекционныезаболевания на территории Республики Алтай: методические рекомендации для студентов, проходящих полевые практики. Горно-Алтайск: РИО ГАГУ, 2010. — 63 с.
  32. , Т.Н. Эрлихиозы / Т. Н. Ермак // Инфекционные болезни: национальное руководство. Под ред. Н. Д. Ющука, Ю. Я. Венгерова. -М.: 2009.-С. 576−582.
  33. Забродин, H.A. Заболеваемость природноочаговыми инфекциями в
  34. Удмуртской республике / H.A. Забродин, Е. С. Горева, В. П. Санников и др. // Журнал «Национальные приоритеты России». 2009. — № 2. — С. 60−61.
  35. Инфекционные болезни: национальное руководство / Под ред. Н.Д.
  36. , Ю.Я. Венгерова. М.: ГЭОТАР-Медиа, 2009. — 1056 с.
  37. , Э.И. Болезнь Лайма (лекция) / Э. И. Коренберг // Мед.паразитол. 1993. — № 1. — С. 48−51.
  38. , Э.И. Иксодовые клещевые боррелиозы как группазаболеваний человека и главные итоги ее изучения в России / Э. И. Коренберг // Журнал инфекционной патологии. 1996.- Т.З.- № 4.- С. 22−24.
  39. , Э.И. Взаимоотношения возбудителей трансмиссивныхболезней вмикст инфицированных иксодовых клещах / Э. И. Коренберг // Паразитология. 1999. Т. 32. — вып. 4. — С. 273−289.
  40. , Э.И. Таксономия, филогенетические связи и областиформирования спирохет рода Borrelia, передающихся иксодовыми клещами / Э. И. Коренберг // Успехи современной биологии. 1996. -№ 116.-С. 389−406.
  41. , Э.И. Изучение и профилактика микст-инфекций, передающихся иксодовыми клещами / Э. И. Коренберг // Вестн. Рос. АМН.-2001.-№ 11.-С. 41−45.
  42. , Э.И. Боррелиозы (инфекции группы Лайм-боррелиоза) / Э.И.
  43. Коренберг // Частная эпидемиология. 2002. — Т. 2. — С. 20−24.
  44. , Э.И. Методические указания по эпидемиологии, диагностике, клинике и профилактике болезни Лайма / Э. И. Коренберг // Под ред. В. А. Насоновой. М. — 1991. — С. 61.
  45. , Э.И. Природная очаговость болезней: Исследованияинститута Гамалея РАМН / Под ред. проф. Э. Н. Коренберга. М.: Русаки, 2003.-С. 99−121.
  46. , Э.И. Иксодовые клещевые боррелиозы / Э. И. Коренберг,
  47. В.И. Покровский, Г. Г. Онищенко и др. // Эволюция инфекц. болезней в России в XX веке. М.: Медицина, 2003. — С. 379−386.
  48. , Э.И. Эрлихиозы новая для России проблема инфекционнойпатологии/ Э. И. Коренберг // Мед. паразитол. 1999. — № 4. — С. 10−16.
  49. , Э.И. Непрямая реакция иммунофлюоресценции влабораторной диагностике иксодовых клещевых боррелиозов / Э. И. Коренберг, В. В. Николенко, Н. Н. Воробьева и др. // Мед. паразитология и паразитарные болезни. 2000. — № 3. — С. 9−16.
  50. , JT.H. Поражение периферической нервной системы приклещевом боррелиозе / JI.H. Кравчук: Автореф. дисс.канд. мед. наук. -Новосибирск, 1989. 19 С.
  51. , В.Н. Обоснование возможности применения реакциииммунофлюоресценции для серологической диагностики клещевых боррелиозов / В. Н. Крючечников, Э. И. Коренберг, С. В. Щербаков // Мед. паразитол. 1985. -№ 6. — С. 39−42.
  52. , В.Н. Простой тест для серологической верификацииборрелиоза / В. Н. Крючечников // Мед. паразитол. п паразит, болезни.- 1998.-№ 4.-С. 35−37.
  53. , В.Н. Серологическая диагностика иксодовых клещевыхборрелиозов: состояние проблемы / В. Н. Крючечников, Э. И. Коренберг // Природно-очаговые инфекции в России: Тез. докл. науч. конф. Омск.- 1998.-С. 73−74.
  54. В.Н., Коренберг Э. И., Деконенко Е. П. и др. Системныйклещевой боррелиоз (Болезнь Лайма). Метод, реком. Москва. 1987. -27 с.
  55. , О.М. Клинико-эпидемиологические закономерности Лаймборрелиоза на Среднем Урале / О. М. Лесняк: Автореф. дисс. .докт. мед. наук. М., 1995. — 51 с.
  56. , О.М. Лайм-боррелиоз / О. М. Лесняк. Екатеринбург, 1999.225с.
  57. , О.М. Частота Лайм-артрита и антител к Borrelia burgdorferi убольных ревматологического профиля в эндемичном районе / О. М. Лесняк, З. И. Соколова, Е. Э. Лайковская и др. // Тер. архив. 1994. — Т. 66,№ 5.-С. 45−47.
  58. Ливанова, H.H. Зоологические предпосылки существования на Северном
  59. Урале инфекций человека, передающихся иксодовыми клещами / H.H. Ливанова, С. Г. Ливанов, В.А. Pap и др. // Журнал «Национальные приоритеты России». 2009. — № 2. — С. 53−55.
  60. Ю.В., Рахманова А. Г., Антонов B.C. и др. Эпидемиология, этиология, клиника, диагностика, лечение и профилактика иксодовых клещевых боррелиозов. Реком. для врачей. СПб., 2000. — 51 с.
  61. Ю.В., Усков А. Н., Ющук Н. Д. и др. Иксодовые клещевыеборрелиозы (этиология, эпидемиология, клиника, диагностика, лечение и профилактика). Метод, реком. ФГОУ «ВУНМЦ Росздрава». М.2007.-46 с.
  62. , Л.А. Состояние иммунной системы при болезни Лайма /
  63. Л.А. Макаренко, М. И. Курдина, И. Н. Побединская // Рос. журнал кож. и венерол. болезней. 2002. — № 1. — С. 25−28.
  64. , В.В. Иксодовые клещевые боррелиозы / В. В. Малов, А.Н.
  65. Горобченко // Леч. врач. 2004. — № 6. — С. 48−51.
  66. И.Н., Манзенюк О. Ю. Клещевые боррелиозы (Болезнь
  67. Лайма). Информ.-метод. пособие. Кольцово. 2005. — 85 с.
  68. , Н.М. Возможности ранней лабораторной диагностикиклещевых нейроинфекций: клещевого энцефалита и Лайм-боррелиоза / Н. М. Марьина, С. А. Шетекаури, И. А. Ольховский // Бюл. Сиб. Мед. 2008. Приложение № 1. — С. 55 — 57.
  69. , В.В. Микроорганизмы порядка Rickettsiales у таежного клещаixodes persulcatus sch.) в Предуралье / В. В. Нефедова и др. // Вестник Российской АМН. 2008. — № 7. — С. 47−50.
  70. , A.C. Дальнейшие наблюдения в природных очагах клещевогориккетсиоза на территории Алтайского края / A.C. Оберт и др. // Эпидемиология и инфекцинные болезни. 2007. — № 4. — С. 34−36.
  71. , A.C. Эрлихиозы и анаплазмозы в очагах сибирского клещевогориккетсиоза Алтайского края / A.C. Оберт, Н. В. Рудаков, H.H. Седых // Детские инфекции. 2009. — № 2. — С. 30 — 32.
  72. , H.A. Инфекции, передающиеся иксодовыми клещами, всеверных районах Омской области / H.A. Пеньевская и др. // Пермский медицинский журнал. 2009. — № 5. — С. 32−39.
  73. , О.С. Клиническая характеристика клещевых микстнейроинфекций, ассоциированных с моноцитарным эрлихиозом человека у детей / О. С. Пиневич: Автореф. дисс.. канд. мед. наук. -Иркутск, 2009. 22 с.
  74. По данным ФГУЗ «Центр гигиены и эпидемиологии в Пермском крае»
  75. , В.Г. Диагностическая эффективность фосфоресцентныхиммуночипов при серодиагностике клещевого энцефалита / В. Г. Помелова, Т. А. Быченкова, Н. И. Бекман и др. // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2009. — № 3. — С. 71−75.
  76. , В.Г. Применение фосфоресцентных иммуночипов длясерологической диагностики иксодовых клещевых боррелиозов / В. Г. Помелова, Э. И. Коренберг, Н. С. Осин и др. // Эпидемиол. и вакцинопроф. -2010. -№ 1. С. 22−29.
  77. Pap, В. А. Вариабельность переносимых иксодовыми клещами бактерийсемейства Anaplasmatacae на территории азиатской части России / В.А. Pap: Автореф. дисс.. канд. биол. наук. Новосибирск, 2011.-21 с.
  78. Pap, В. А. Изучение генетической вариабельности А. phagocytophilum /
  79. В.А. Pap, Т. И. Епихина // Журнал «Национальные приоритеты России». 2011. — № 2 (5). Специальный выпуск. — С. 165−167.
  80. Pap, В. А. Изучение генетического разнообразия анаплазм и эрлихий впаразитарных системах юга Западной Сибири и Урала / В.А. Pap, H.H. Ливанова, В. В. Панов и др. // Бюл. сиб. мед. 2006. — Приложение № 1. -С. 116−120.
  81. , Ю.Н. Клинико-лабораторная характеристикагранулоцитарного эрлихиоза человека на юге Дальнего Востока России / Ю. Н. Сидельников, О. Ю. Медянников, Л. Н. Иванов и др. // Эпид. и инф. бол. 2002. — № 3. — С. 28−31.
  82. Скрипникова, И. А. Иммунологический гуморальный ответ у больных
  83. Лаймской болезнью / И. А. Скрипникова, Л. П. Ананьева, В. Г. Барскова и др. // Тер. архив. 1995. -№ 11. — С. 53—57.
  84. , A.C. Лайм-артрит: поражения суставов при Лайм-боррелиозе в
  85. США / A.C. Стир // Тер. архив. 1995. — № 11. — С. 43−45.
  86. , О.Н. Клинико-лабораторная характеристика раннего периодаиксодовых клещевых боррелиозов / О. Н. Сумливая: Автореф. дисс.канд. мед. наук. Пермь, 2002. — 19 с.
  87. Telford III, S.R. Выявление в России природных очагов бабезиоза игранулоцитарного эрлихиоза / S.R. Telford III, Э. И. Коренберг, Н.К. Goethert и др // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 2002. — № 6. — С. 21−25.
  88. , М.К. Новые формы клещевых инфекций в Прибайкалье / М.К.
  89. , И.В. Козлова, М.М. Верхозина и др. // Материалы научной конференции с международным участием «Этиологические, эпидемиологические и клинические аспекты инфекционных болезней». Иркутск, 2010. — С. 200−201.
  90. , А.Н. Клинико-иммунологическая характеристика клещевогоборрелиоза в северо-западном регионе России / А. Н. Усков: Автореф. дис.канд. мед. наук. СПб, 1993. — 21 с.
  91. , Е.С. Механизмы регуляции воспаления и иммунитета впатогенезе болезни Лайма / Е. С. Федоров, В. Г. Барскова, Л. П. Ананьева и др. // Клин. Медицина. 1999. — № 6. — С. 14−19.
  92. , В.И. Эпидемиологическая характеристика и клиниколабораторная диагностика заболеваний, передающихся иксодовыми клещами (на примере Прикамья) / В. И. Фризен: Автореф.канд.мед.наук. Пермь, 2005. — 18 с.
  93. , В.И. Иксодовые клещевые боррелиозы: применение новых тестсистем для серологической диагностики иммуноферментным методом / В. И. Фризен, Э. И. Коренберг, М. В. Афанасьева и др. // Инфекц. болезни. 2005. — № 3. — С. 28−32.
  94. , A.M. О клещевой эритеме / A.M. Шаповал, Р. И. Кузнецова,
  95. A.A. Чурилова // Проблемы клещевых боррелиозов. М., 1993. — С. 5664.
  96. , С.Н. Новые данные о выявлении эрлихий и анаплазм виксодовых клещах в России и Казахстане / С. Н. Шпынов, Н. В. Рудаков, В. К. Ястребов и др. // Мед. паразитол. и паразитарн. бол. 2004. — № 2. -С. 10−14.
  97. , Н.Д. Лекции по инфекционным болезням / Н. Д. Ющук, Ю.Я.
  98. Венгеров. 3-е изд., перераб. и доп. — М.: Медицина, 2007. — 1032 е.: ил.
  99. Abu Al-Soud, W. Purification and characterization of PCR-inhibitory components in blood cells / W. Abu Al-Soud, P. Radstrom // J. Clin. Microbiol. -2001.-Vol. 39. P. 485−493.
  100. Aguero-Rosenfeld, M.E. Diagnosis of human granulocytic ehrlichiosis: state of the art / M.E. Aguero-Rosenfeld // Vector Borne Zoonotic Dis. 2002. -№ 4.-P. 233−239.
  101. Aguero-Rosenfeld, M.E. Serology of culture-confirmed cases of human granulocytic ehrlichiosis / M. E. Aguero-Rosenfeld et al. // J. Clin. Microbiol. 2000. — № 2. — P. 635−638.
  102. Aguero-Rosenfeld, M.E. Human granulocytic ehrlichiosis: a case series froma single medical center in New York State/ M.E. Aguero-Rosenfeld, H.W. Horowitz, G.P. Wormser et al.// Ann. Intern. Med. 1996. — Vol. 125. — P. 904−908.
  103. Aguero-Rosenfeld, M.E. Diagnosis of Lyme Borreliosis / M.E. Aguero
  104. Rosenfeld, G. Wang, I. Schwartz et al. // J. Clin. Microbiol. 2005. — Vol. 18.-P. 484−509.
  105. Akkoyunlu, M. Gamma interferon dominates the murine cytokine response to the agent of human granulocytic ehrlichiosis and helps to control the degree of early rickettsemia / M. Akkoyunlu, E. Fikrig // Infect. Immun. 2000. — Vol. 68. — P.1827−1833.
  106. Akkoyunlu, M. Exploitation of interleukin-8-induced neutrophil Chemotaxis by the agent of human granulocytic ehrlichiosis/ M. Akkoyunlu, S.E. Malawista, J. Anguita et al. // Infect. Immun. 2001. — Vol. 69. — P.5577−5588.
  107. Alekseev, A. First determination of ehrlichia infected ticks among the primary vectors of the tick-borne encephalitis and borreliosis in the Russian Baltic region/ A. Alekseev, H. Dubinina// Bull. Scand. Soc. Parasitol. 1998. — № 8 (2).-P. 88−91.
  108. Alekseev, A. Identification of Ehrlichia spp. and Borrelia burgdorferi in1. odes Ticks in the Baltic region of Russian/ A. Alekseev, H. Dubinina, I. Van De Pol // J. Clin. Microbiol. June 2001. — P. 2237 — 2242.
  109. Arnez, M. Isolation of Borrelia burgdorferi sensu lato from blood of childrenwith solitary erythema migrans / M. Arnez, E. Ruzic-Sabljic, J. Ahcan et al. // Pediatr. Infect. Dis. J. 2001. — Vol. 20. — P. 251−255.
  110. Arnez, M. Bloodstream invasion of Borrelia burgdorferi sensu lato in
  111. Asbrink, E. Comments on the Course and Classification of Lyme Borreliosis /
  112. E. Asbrink, A. Hovmark // Scand. Infect. Dis. 1991. — Suppl. 77. — P. 4143.
  113. Asbrink, E. Early and Late Cutaneous Manifestations in Ixodes-borne
  114. Borreliosis (Erythema Migrans Borreliosis, Lyme Borreliosis) / E. Asbrink, A. Hovmark // Lyme Disease and Related Disorders. Edited by Benach J.L. and Bosler E.M. New York, 1988. — Vol. 539. — P. 4−5.
  115. Bakken, J.S. Serial measurements of hematological counts during the active phase of human granulocytic ehrlichiosis / J.S. Bakken, M.E. Aguero-Rosenfeld, R.L. Tilden et al. // Clin. Infect. Dis. 2001. — № 6. — P. 862−870.
  116. Bakken, J.S. Human granulocytic ehrlichiosis / J.S. Bakken, J.S. Dumler //
  117. Clin. Infect. Dis. 2000. — Vol. 31. — P. 554 — 560.
  118. Bakken, J.S. Human granulocytic ehrlichiosis in the upper midwest United States. A new species emerging? / J.S. Bakken, J.S. Dumler, S.M. Chen et al. // JAMA. 1994. -Vol. 272. — P. 212−218.
  119. Bakken, J.S. Demyelinating polyneuropathy associated with humangranulocytic ehrlichiosis / J.S. Bakken, S.A. Erlemeyer, R.J. Kanoff et al. // Clin. Infect. Dis.- 1998.-Vol. 27.-P. 1323- 1324.
  120. Bakken, J.S. The serological response of patients infected with the agent of
  121. Human Granulocytic Ehrlichiosis / J.S. Bakken, I. Haller, D. Riddel // Clin. Infect. Dis. 2002.-Vol. 34. — P. 22−27.
  122. Bakken, J.S. Clinical and laboratory characteristics human granulocyticehrlichiosis / J.S. Bakken, J. Krueth, C. Wilson-Nordskog et al. // JAMA. -1996. Vol. 275. — P. 199 — 205.
  123. Barbour, A.G. Isolation and cultivation of Lyme disease spirochetes / A.G.
  124. Barbour // The Yale Journal of Biology and Medicine. 1984. — Vol. 57. -P. 521−525.
  125. Barlough, J.E. Protection against Ehrlichia equi is conferred by prior infectionwith the human granulocytic ehrlichia (HGE agent)/ J.E. Barlough, J.E. Madigan, E. Derock et al. // J. Clin. Microbiol. 1995. — Vol. 33. — P. 33 333 334.
  126. Barlough, J.E. Ehrlichia phagocytophila genogroup rickettsia in Ixodid ticksfrom California collected in 1995 and 1996 / J.E. Barlough, J.E. Madigan, V.L. Kramer et al. // J. Clin. Microbiol. 1997. Vol. 35. — P. 2018 — 2021.
  127. Barton, L.L. Infection with Ehrlichia in childhood / L.L. Barton, M.H.
  128. Rathore, J.E. Dawson//J. Pediatr. 1992.-Vol. 120.-P. 998- 1001.
  129. Berger, B.W. Cultivation of Borrelia burgdorferi from erythema migrans lesions and perilesional skin / B.W. Berger, R.C. Johnson, C. Kodner et al. // J. Clin. Microbiol. 1992. — Vol. 30. — P. 359−361.
  130. H.Beutler, B.A. Cachectin tumor necrosis factor: production, distribution, and metabolic fate in vivo / B.A. Beutler, I.W. Milsark, A. Cerami // J. Immunol. — 1985.-Vol. 135.-P. 3972−3977.
  131. Billings, A.N. Tick-borne diseases in Texas: a 10-year retrospectiveexamination of cases / A.N. Billings, J.A. Rawlings, D.H. Walker // Texas Medicine. 1998. — Vol. 94. — № 12. — P. 66 — 76.
  132. Bjorsdorff, A. Variable presentation and course in human granulocyticehrlichiosis: twelve case reports of the new tick-borne zoonosis / A. Bjorsdorff, J. Berglund, B.E. Kristiansen et al. // Lakartidningen. 1999. -Vol. 96.-P. 4200−4204.
  133. Bjorsdorff, A. Ehrlichia-infected ticks on migrating birds / A. Bjorsdorff, S.
  134. Bergstrom, R.F. Massung et al. // Emerg. Infect. Dis. 2001. — Vol.7. — P. 877 — 879.
  135. Bockenstedt, L.K. The pathogenesis and prevention of Lyme disease / L.K. Bockenstedt // 61 National Scientific Meeting. Washington, 1997. — P. 111.
  136. Bradley, J.F. The persistence of spirochetal nucleic acids in active Lymearthritis / J.F. Bradley, R.C. Johnson, J.L. Goodman // Ann. Intern. Med. -1994. Vol. 120. — P. 487−489.
  137. Brandsma, A.R. Novel Ehrlichia organism (Rickettsiales: Ehrlichieae) in white-tailed deer associated with lone star tick (Acari: Ixodidae) parasitism/
  138. A.R. Brandsma, S.E. Little, G.M. Lockhart et al. // J. of Med. Entomol. -1999. № 36 (2). — P. 190 — 194.
  139. Brouqui, P. Guidelines for the diagnosis of tick-borne bacterial diseases in Europe / P. Brouqui, F. Bacellar, G. Baranton et al. // Clin. Microbiol. Infect. -2004.-Vol. 10.-P. 1108−1132.
  140. Brouqui, P. Human granulocytic ehrlichiosis in Europe / P. Brouqui, J.S.
  141. Dumler, R. Lienhard et al. // Lancet. 1995.- Vol. 346. — P. 782−783.
  142. Buller, R. Ehrlichia ewingii, a newly recognized agent of human ehrlichiosis / R. Buller, M. Arens, S. Hmiel et al.//N. Engl. J. Med. 1999. — Vol. 341. -P. 148 — 155.
  143. Burgdorfer, W. Erythema chronicum migrans a tickborne spirochetosis / W. Burgdorfer, A.G. Barbour, S.F. Hayes et al. // Acta Trop. — 1983. — Vol. 40. -P. 79−83.
  144. Cerar, T. Comparison of PCR methods and culture for the detection of Borrelia spp. in patients with erythema migrans / T. Cerar, E. Ruzic-Sabljic, U. Glinsek et al. // Clin. Microbiol. Infect. 2008. — Vol. 14. — P. 653−658.
  145. Cerar, T. Validation of Cultivation and PCR Methods for Diagnosis of Lyme
  146. Neuroborreliosis / T. Cerar, K. Ogrinc, J. Cimperman et al. // J. Clin. Microbiol. 2008. — Vol. 46. — P. 3375−3379.
  147. Chen, S. Western immunoblotting analysis of the antibody responses ofpatients with human monocytotropic ehrlichiosis to different strains of
  148. Ehrlichia chaffeensis and Ehrlichia canis / S. Chen, L.C. Cullman, D.H. Walker // Clin. Diagn. Lab. Immunol. 1997. — Vol. 4. — P. 731 — 735.
  149. Chen, S.M. Identification of a granulocytotropic Ehrlichia species as theetiologic agent of human disease // S.M. Chen, J.S. Dumler, J.S. Bakken et al. // J. Clin. Microbiol. 1994. -Vol. 32. — P. 589−595.
  150. Christen, H.J. Evaluation of the polymerase chain reaction for the detection of
  151. Borrelia burgdorferi in cerebrospinal fluid of children with acute peripheral facial palsy / H.J. Christen, H. Eiffert, A. Ohlenbusch et al. // Eur. J. Pediatr. 1995.-Vol. 154.-P. 374−377.
  152. Christova, I.S. Human granulocytic ehrlichiosis in Bulgaria / I.S. Christova,
  153. J.S. Dumler // Am. J. Trop. Med. Hyg. 1999. — Vol. 60. — P. 58 — 61.
  154. Courtney, J.W. Multiplex real-time PCR for detection of Anaplasmaphagocytophilum and Borrelia burgdorferi /. .W. Courtney, L.M. Kostelnik, N.S. Zeidner et al. // J. Clin. Microbiol. 2004. -Vol. 42. — P. 3164−3168.
  155. Daniels, T.J. Deer ticks (Ixodes scapularis) and the agents of Lyme diseaseand human granulocytic ehrlichiosis in a New York City park / T.J. Daniels, R.C. Falco, I. Schwartz et al. // Emerg. Infect. Dis. 1997. — № 3. — P. 353 -355.
  156. Dattwyler, R. Seronegative Lyme disease. Dissociation of specific T- and B-lymphocyte responses to Borrelia burgdorferi / R. Dattwyler, D. Volkman, B. Luft et al. // N. Engl. J. Med. 1988. -Vol. 319. — P. 1441−1446.
  157. Des Vignes, F. Transmission of the agent of human granulocytic ehrlichiosisby host seeking Ixodes scapularis in southern New York State / F. Des Vignes, D. Fish // J. Med. Entomol. 1997. — Vol. 34. — P. 379 — 382.
  158. Dicaudo, D.J. Acrodermatitis chronica atrophicans in the United States: clinical and histopathologic features of six cases / D.J. Dicaudo, W.P. Su, W.F. Marshall et al. // Cutis. 1994. — Vol. 54, № 2. — P. 81 — 84.
  159. Doyle, C.K. Detection of medically important Ehrlichia by quantitativemulticolor TaqMan real-time polymerase chain reaction of the dsb gene /
  160. C.K. Doyle, M.B. Labruna, E.B. Breitschwerdt et al. // J. Mol. Diagn. -2005.-Vol. 7.-P. 504−510.
  161. Dumler, J.S. Molecular diagnosis of Lyme disease: review and meta-analysis /
  162. J.S. Dumler // Mol. Diagn. 2001. -Vol.6. — P. 1−11.
  163. Dumler, J.S. Ehrlichial diseases of humans: emerging tick-borne infections /
  164. J.S. Dumler, J.S. Bakken // Clin. Infect. Dis. 1995. — Vol. 20. — P. 1102 -1110.
  165. Dumler, J.S. Human ehrlichioses. Newly recognized infections transmitted byticks / J.S. Dumler, J.S. Bakken // Annu Med Rev. 1998. — Vol. 49. — P. 201−211.
  166. Dumler, J.S. Reorganization of genera in the families Rickettsiaceae and
  167. Dumler, J.S. Human Granulocytic Anaplasmosis and Anaplasmaphagocytophilum / J.S. Dumler, K.S. Choi, J.C. Garcia-Garcia et al. // Emerg. Infect. Dis. 2005. — Vol. 11. — P. 1828−1834.
  168. Dumler, J.S. Human ehrlichiosis: hematopathology and immunologicdetection of Ehrlichia chaffeensis / J.S. Dumler, J.E. Dawson, D.H. Walker // Hum. Pathol. 1993. — Vol. 24. — P. 391 — 396.
  169. Dumler, J.S. Ehrlichioses in humans: epidemiology, clinical presentation, diagnosis, and treatment / J.S. Dumler, J.E. Madigan, N. Pusterla et al. // Clin. Infect. Dis. 2007. — Vol. 4. — P. 45−51.
  170. Dumler, J.S. Serum cytokine responses during acute human granulocyticehrlichiosis / J.S. Dumler, E.R. Trigiani, J.S. Bakken et al. // Clin. Diagn. Lab. Immunol. 2000. — Vol. 7. — P. 6 — 8.
  171. Dumler, J.S. Tick-borne ehrlichioses / J.S. Dumler, D.H. Walker// Lancet1. fectious Diseases. April. 2001. — P. 21 — 28.
  172. Duray, P.H. Clinical Pathologic Correlations of Lyme Disease / P.H. Duray // Reviews of Infections Disease. 1989. — Vol. 11. — Suppl. 6. — P. 14 871 493.
  173. Edelman, D.C. Evaluation of an improved PCR diagnostic assay for human granulocytic ehrlichiosis / D.C. Edelman, J.S. Dumler // Mol. Diag. 1996. -№ 1.-P. 41−49.
  174. Eliasson, I. Does human ehrlichiosis exist in Sweden? / I. Eliasson, A. Bjorsdorff// Lakartidningen. 1997. — Vol. 94. — P. 3487 — 3488.
  175. Engstrom, S.M. Immunoblot interpretation criteria for serodiagnosis of early Lyme disease / S.M. Engstrom, E. Shoop, R.C. Johnson // J. Clin. Microbiol.- 1995. Vol. 33 (2). — P. 419−427.
  176. Fichtenbaum, C.J. Ehrlichiosis presenting as a life-threatening illness withfeatures of the toxic shock syndrome / C.J. Fichtenbaum, L.R. Peterson, G.J. Weil // Am. J. Med. 1993. — Vol. 95. — P. 351 — 357.
  177. Fishbein, D.B. Human ehrlichiosis: prospective active surveillance in febrilehospitalized patients / D.B. Fishbein, J.E. Dawson, D.H. Fields // Infect. Dis.- 1989. Vol. 160. — P. 803 — 809.
  178. Foldvari, G. Borrelia spielmanii erythema migrans, Hungary / G. Foldvari, R.
  179. Farkas, A. Lakos // Emerg. Infect. Dis. 2005. — Vol. 11. — P. 1794−1795.
  180. Goodman, J.L. Direct cultivation of the causative agent of humangranulocytic ehrlichiosis / J.L. Goodman et al. //N. Engl. J. Med. 1996. -№ 4.-P. 209−215.
  181. Goodman, J.L. Bloodstream invasion in early Lyme disease: results from aprospective, controlled, blinded study using the polymerase chain reaction / J.L. Goodman, J.F. Bradley, A.E. Ross et al. // Am. J. Med. 1995. — Vol. 99.-P. 6−12.
  182. Gordon, W.S. Tick-borne fever (a hitherto undescribed disease of sheep) /
  183. W.S. Gordon, A. Brownlee, D.R. Wilson // J. Comp. Pathol. Ther. 1932. -Vol. 45. P. 301−312.
  184. Guy, E.C. Detection of Borrelia burgdorferi in patients with Lyme disease bypolymerase chain reaction / E.C. Guy, G. Stanek // J. Clin. Pathol. 1991. -Vol. 44.-P. 610−611.
  185. Habicht, G.S. Cytokines in Borrelia Burgdorferi infection. Lyme Disease.
  186. Molecular and immunologic approaches. Current communication / G.S. Habicht // Ctll. Mol. Biol. 1992. — Vol. 6. — P. 149−167.
  187. Habicht, G.S. The role in Interleukin-1 in the Pathogenesis of Lyme Disease /
  188. G.S. Habicht, G. Beck, J.L. Benach // Lyme Disease and Related Disorders. Edited by Jorge L. Benach and E.M. Bosler. New York. 1988. — Vol. 539. -P. 80−86.
  189. Hansen, K. Measurement of antibodies to the Borrelia burgdorferi flagellumimproves serodiagnosis in Lyme disease / K. Hansen, P. Hindersson, N.S. Pedersen // J. Clin. Microbiol. 1988. — Vol. 26. — P. 338−346.
  190. Hardalo, C. Human granulocytic ehrlichiosis in Connecticut: report of a fatal case / C. Hardalo, V. Quagliarello, J. S. Dumler // Clin. Infect. Dis. 1995. -Vol.21.-P.910−914.
  191. Heo, E.J. Serologic and Molecular Detection of Ehrlichia chaffensis and Anaplasma phagocytophila (Human Granulocytic Ehrlichiosis Agent) in Korean Patients / E.J. Heo, J.H. Park, J.R. Koo et al. // J. Clin. Microbiol. -2002. № 8. — P. 3082 — 3085.
  192. Hoang Xuan, T. Keratite dans la maladie de Lyme / T. Hoang Xuan, C. Menuet, G. Abirached // J. Fr. Ophtalmol. 1994. — T. 17, № 8−9. — P. 513 521.
  193. Hodzic, E. Acquisition and transmission of the agent of human granulocytic ehrlichiosis by Ixodes scapularis ticks / E. Hodzic, D. Fish, C. M. Maretzki et al. // J. Clin. Microbiol. 1998. — Vol. 36. — P. 3574 — 3578.
  194. Horowitz, H.W. Brachial plexopathy associated with human granulocyticehrlichiosis / H.W. Horowitz, S.J. Marks, M. Weintraub et al. // Neurology. 1996. — Vol. 46. — P. 1026 — 1029.
  195. Hossain, D. Clinical and laboratory evolution of a culture confirmed case of human granulocytic ehrlichiosis / D. Hossain, M.E. Aguero-Rosenfeld, H.W. Horowitz et al. // Conn. Med. 1999. — Vol. 63. — P. 265 — 270.
  196. Ijdo, J.W. Serodiagnosis of human granulocytic ehrlichiosis by a recombinant
  197. HGE-44 based enzyme-linked immunosorbent assay / J.W. Ijdo et al. // J. Clin. Microbiol. — 1999.-№ 11.-P. 3540−3544.
  198. Irving, R.P. Distribution of Ehrlichia chaffeensis (Rickettsiales:
  199. Ismail, N. Human ehrlichiosis and anaplasmosis /N. Ismail, K.C. Bloch, J.W.
  200. McBride // Clin. Lab. Med. 2010. — № 1. — P. 261 -292.
  201. Jahangir, A. Fatel pancarditis associated with human granulocytic ehrlichiosisin a 44-year-old man / A. Jahangir, C. Kolbert, W. Edwards et al. // Clin. Infect. Dis. 1998. — Vol. 27. — P. 1424 — 1427.
  202. Johnson, R.S. Borrelia burgdorferi sp. nov.: etiologic agent of Lyme disease /
  203. R.S. Johnson, G.P. Schmid, F.W. Hyde et al. // Internat. J. of System Bacteriol. 1984. — № 34 — P. 496−497.
  204. Katargina, O. Identification of Anaplasma phagocytophilum in tickpopulations in Estonia, European Part of Russia and Belarus / O. Katargina, J. Geller, A. Alekseev // Clin. Microbiol. Infect. 2012. — Vol. 18. — P. 4046.
  205. Katavolos, P. Duration of tick attachment required for transmission of granulocytic ehrlichiosis / P. Katavolos, P.M. Armstrong, J.E. Dawson et al. //J. Infect. Dis.- 1998.-Vol. 177.-P. 1422−1425.
  206. Katzel, J.H. Lyme Disease without Erythema migrans, five cose studies / J.H. Katzel, R.I. Ritter // Program and Abstr. Of V Intern. Conf. on Lyme Borreliosis. Arlington, USA, 1992. — P. 55.
  207. Keysary, A. Serologic evidence of human monocytic and granulocytic ehrlichiosis in Israel / A. Keysary, L. Amram, G. Keren et al. // Emerg. Infect. Dis. 1999. — Vol. 5. — P. 775−778.
  208. Kim, H.Y. Cytokine Gene Expression by Peripheral Blood Leukocytes in
  209. Horses Experimentally Infected with Anaplasma phagocytophila / H.Y. Kim, J. Mott, N. Zhi et al. // Clinical and Diagnostic Laboratory Immunology. 2002. — Vol. 9. -№ 5.-P. 1079−1084.
  210. Kondrusik, M. Molecular and serological diagnosis of Borrelia Burgdorferi infection among patients with diagnosed erythema migrans / M. Kondrusik, S. Grygorczuk, B. Skotarczak et al. // Ann. Agric. Environ. 2007. — Vol. 14.-P. 209−213.
  211. Korenberg, E.I. Genotyping of Borrelia burgdorferi sensu lato in Russia / E.I.
  212. Korenberg et al. // In: Cabello F.C., Hulinska D. and Godfrey H.P. (eds.).
  213. Molecular Biology of Spirochetes. IOS Press. Amsterdam, Berlin, Oxford, Tokyo, Washington. 2006. — P. 174 — 199.
  214. Korenberg, E.I. Ecology of Borrelia burgdorferi sensu lato in Russia / E.I.
  215. Korenberg et al. // In: J. Gray, O. Kahl, R.S. Lane, G. Stanek (ed.). Lyme Borreliosis: biology, epidemiology and control. CAB International. 2002. -P. 175−200.
  216. Korenberg, E.I. Ixodes persulcatus tick is a vector of different agents in the
  217. Cisural region, Russia / E.I. Korenberg et al. // In: Bruin J., ed. Proceedings of 12-th International Congress of Acarology, Amsterdam. -2006.-P. 99- 100.
  218. Krause, P.J. Disease-specific diagnosis of coinfecting tickborne zoonoses: babesiosis, human granulocytic ehrlichiosis, and Lyme disease / P.J. Krause, K. McKay, C.A. Thompson et al. // Clin. Infect. Dis. 2002. — Vol. 34. — P. 1184−1191.
  219. Lebech, A.M. Diagnostic value of PCR for detection of Borrelia burgdorferi DNA in clinical specimens from patients with erythema migrans and Lyme neuroborreliosis / A.M. Lebech, K. Hansen, F. Brandrup et al. // Mol. Diagn. -2000.-Vol. 5.-P. 139−150.
  220. Levin, M.L. Acquisition of coinfection and simultaneous transmission of
  221. Borrelia burgdorferi and Ehrlichia phagocytophila by Ixodes scapularis ticks / M.L. Levin, D. Fish // Infect Immun. 2000. — Vol. 68. — P. 2183 — 2186.
  222. Liebling, M.R. The polymerase chain reaction for the detection of Borreliaburgdorferi in human body fluids / M.R. Liebling, M.J. Nishio, A. Rodriguez et al. //Arthritis Rheum. 1993.-Vol. 36.-P. 665−675.
  223. Lin, M. Ehrlichia chaffeensis downregulates surface toll-like receptors 2/4,
  224. CD 14 and transcription factors PU. l and inhibits lipopolysaccharide activation of NF-kB, ERK ½ and p38 MAPK in host monocytes / M. Lin, Y. Rikihisa // Cell Microbiol. 2004. -Vol.6. — P. 175−186.
  225. Little, S.E. Development and use of specific polymerase reaction for thedetection of an organism resembling ehrlichia sp. in white-tailed deer / S.E.1.ttle, J.E. Dawson, J.M. Lockhart et al. // J. Wildl. Dis. 1997. — Vol. 33. -P. 246−253.
  226. Lotric-Furlan, S. Human granulocytic ehrlichiosis in central Europe / S.1.tric-Furlan, M. Petrovec, T. Avsic-Zupanc et al. // Wien Klin. Wochenschr. 1998. — Vol. 110. — P. 894 — 897.
  227. Maraspin, V. Isolation of Borrelia burgdorferi sensu lato from blood of patients with erythema migrans / V. Maraspin, E. Ruzic-Sabljic, J. Cimperman et al. // Infection. 2001. — Vol. 29. — P. 65−70.
  228. Marty, A.M. Ehrlichiosis mimicking thrombotic thrombocytopenic purpura.
  229. Case report and pathological correlation / A.M. Marty, J.S. Dumler, G. Imes et al. // Human Pathol. 1995. — Vol. 26. — P. 920−925.
  230. Massung, R.F. Nested PCR assay for detection of granulocytic ehrlichiae / R.F. Massung et al. // J. Clin. Microbiol. 1998. — № 4. — P. 1090−1095.
  231. Mcdade, J.E. Ehrlichiosis A Disease of Animals and Humans / J.E. Mcdade // J. Infect. Dis. — 1990. — Vol. 161. — № 6. — P. 9−17.
  232. Nadelman, R.B. Simultaneous human granulocytic ehrlichiosis and Lyme borreliosis / R.B. Nadelman, H.W. Horowitz, T.-C. Hsieh et al. // N. Engl. J. Med. 1997. — Vol. 337. — P. 27 — 30.
  233. Nocton, J.J. Detection of Borrelia burgdorferi DNA by polymerase chain reaction in synovial fluid from patients with Lyme arthritis / J.J. Nocton, F. Dressler, B.J. Rutledge et al. // N. Engl. J. Med. 1994. — Vol. 330. — P. 229−234.
  234. Nowakowski, J. Blood cultures for patients with extracutaneous manifestations of Lyme disease in the United States / J. Nowakowski, D. McKenna, R.B. Nadelman // Clin. Infect. Dis. 2009. — Vol. 49. — P. 17 331 735.
  235. Oschmann P. Lyme Borreliosis and Tick-Borne Encephalitis / Eds. P.
  236. Oschmann, P. Kraiczy et al. Bremen, Germany, 1999. — 144 p.
  237. Paddock, C.D. Brief report: fatal seronegative ehrlichiosis in a patient with
  238. HIV infection / C.D. Paddock, D.P. Suchard, K.L. Grumbach et al. // N. Engl. J. Med. 1993. — Vol. 329. — P. 1164 — 1167.
  239. Petrovec, M. Human disease in Europe caused by a granulocytic Ehrlichiaspecies / M. Petrovec, F.S. Lotric, T.A. Zupanc et al. // J. Clin. Microbiol. -1997.-Vol. 35.-P. 1556−1559.
  240. Preac-Mursic, V. European Borrelia burgdorferi isolated from humans andticks culture conditions and antibiotic susceptibility / V. Preac-Mursic, B. Wilske, G. Schierz // Zentralbl. Bakteriol. Mikrobiol. Hyg. A. 1986. — Vol. 263. P. 112−118.
  241. Priem, S. An optimized PCR leads to rapid and highly sensitive detection of
  242. Borrelia burgdorferi in patients with Lyme borreliosis / S. Priem, M.G. Rittig, T. Kamradt et al. // J. Clin. Microbiol. 1997. — Vol. 35. — P. 685 690.
  243. Puius, Y.A. Lyme arthritis: pathogenesis, clinical presentation, and management / Y.A. Puius, R.A. Kalish // Infect. Dis. Clin. North. Am. -2008. Vol. 22. — P. 289−300.
  244. Rich, S.M. Distribution of Ixodes ricinus-like ticks of eastern North America /
  245. S.M. Rich, D.A. Caporale, S.R. Telford et al. // Proc. Natl. Acad. Sei. USA. 1995. — Vol. 92. — P. 6284 — 6288.
  246. Richter, P.J. Ixodes pacificus as a vector of Ehrlichia equi / P.J. Richter, R.B.
  247. Kimsey, J.E. Madigan et al. // J. Med. Entomol. 1996. — Vol. 33. — P. 1 -5.
  248. Ruzic-Sabljic, E. Characterization of Borrelia burgdorferi sensu lato strainsisolated from human material in Slovenia / E. Ruzic-Sabljic, V. Maraspin, S. Lotric-Furlan et al. // Wien Klin. Wochenschr. 2002. — Vol. 114. — P. 544 550.
  249. Santino, I. Detection of Borrelia burgdorferi sensu lato DNA by PCR in serumof patients with clinical symptoms of Lyme borreliosis / I. Santino, F. Berlutti, F. Pantanella et al. // FEMS Microbiol. Lett. 2008. — Vol. 283. -P. 30−35.
  250. Schmidli, J. Cultivation of Borrelia burgdorferi from joint fluid three monthsafter treatment of facial palsy due to Lyme borreliosis / J. Schmidli, T. Hunziker, P. Moesli et al. // J. Infect. Dis. 1988. — Vol. 158. — P. 905−906. (Letter)
  251. Schmidt, B.L. PCR in laboratory diagnosis of human Borrelia burgdorferiinfections / B.L. Schmidt // Clin. Microbiol. Rev. 1997. — Vol. 10. — P. 185−201.
  252. Shea, K.W. Ehrlichia equi infection associated with rhabdomyolysis / K.W.
  253. Shea, A.J. Calio, N.C. Klein et al. // Clin. Infect. Dis. 1996. — Vol. 22. — P. 605.
  254. Silaghi, C. Genetic variants of Anaplasma phagocytophilum from 14 equinegranulocytic anaplasmosis cases / C. Silaghi, G. Liebisch, K. Pfister // Parasit. Vectors.-2011.- № 4. -P. 161.
  255. Sirigireddy, K.R. Multiplex detection of ehrlichia and anaplasma speciespathogens in peripheral blood by real-time reverse transcriptase-polymerase chain reaction / K.R. Sirigireddy, R.R. Ganta // J. Mol. Diagn. 2005. — Vol. 7.-P. 308−316.
  256. Snydman, D.R. Borrelia burgdorferi in joint fluid in chronic Lyme arthritis /
  257. D.R. Snydman, D.P. Schenkein, V.P. Berardi et al. // Ann. Intern. Med. -1986. Vol. 104. — P. 798 — 800.
  258. Stanek, G. European Union Concerted Action on Risk Assessment in Lyme
  259. Borreliosis: clinical case definitions for Lyme borreliosis / G. Stanek, S. O’Connell, M. Cimmino et al. // Wien Klin. Wochenschr. 1996. — Vol. 108.-P. 741−747.
  260. Stanek, G. Lyme borreliosis / G. Stanek, G.P. Wormser, J. Gray et al. //1.ncet. 2012. — Vol. 379. — P. 461−473.
  261. Steere, A.C. Lyme disease / A.C. Steere // New Engl. J. Med. 1989. Vol.321.-P. 586−596.
  262. Steere, A.C. Clinical definitions and differential diagnosis of Lyme Arthritis /
  263. A.C. Steere // Scand. J. Infect. Dis. 1991. — Suppl. 77. — P. 51−54.
  264. Steere, A.C. Lyme borreliosis in 2005, 30 years after initial observations in1. me Connecticut / A.C. Steere // Wien Klin. Wochenschr. 2006. — Vol. 118.-P. 625−633.
  265. Steere, A.C. The early clinical manifestations of Lyme disease / A.C. Steere,
  266. N. Bartenhagen, J. Craft et al. // Ann. Intern. Med. 1983. — Vol. 99. — P. 76−82.
  267. Steere, A.C. Treatment of the Early Manifestation of Lyme Disease / A.C.
  268. Steere, G.J. Hutchinson, D.W. Rahn et al. // Ann. Intern. Med. 1983. -Vol. 99, № 1.-P. 22−26.
  269. Strle, F. European Lyme borreliosis: 231 culture-confirmed cases involvingpatients with erythema migrans / F. Strle, J.A. Nelson, E. Ruzic-Sabljic et al. // Clin. Infect. Dis. 1996. — Vol. 23. — P. 61−65.
  270. Swanson, J. Coinfections acquired from Ixodes ticks / J. Swanson, D. Neitzel,
  271. K.D. Reed et al. // Clin. Microbiol. Rev. 2006. — Vol. 19. — P. 708−727.
  272. Tachibana, N. Sennetsu fever: the disease: diag-nosis, and treatment / N.
  273. Tachibana // Microbiology: 1986. Washington, DC: Ame. Society for Microbiol. Vol. 1986. — P. 205 — 208.
  274. Telford, S.R. Perpetuation of the agent of human granulocytic ehrlichiosis in adeer tick-rodent cycle / S.R. Telford, J.E. Dawson, P. Katavolos et al. // Proc. Natl. Acad. Sei. USA. 1996. — Vol. 93. — P. 6 — 14.
  275. Thomas, R.J. Current management of human granulocytic anaplasmosis, human monocytic ehrlichiosis and Ehrlichia ewingii ehrlichiosis / R.J. Thomas, J.S. Dumler, J.A. Carlyon // Expert Rev. Anti. Infect. Ther. 2009. — № 6. — P. 709−722.
  276. Tibbies, C. Does this patient have erythema migrans? / C. Tibbies, J. Edlow //
  277. JAMA. 2007. — Vol. 297. — № 23. — P. 2617−2627.
  278. Unver, A. Western blot analysis of sera reactive to human monocyticehrlichiosis and human granulocytic ehrlichiosis agents / A. Unver et al. // J. Clin. Microbiol. 2001. — № 11. — P. 3982−3986.
  279. Van Dam, A.P. Different genospecies of Borrelia burgdorferi are associatedwith distinct clinical manifestations of Lyme borreliosis / A.P. Van Dam, H. Kuiper, K. Vos et al. // Clin. Infect. Dis. 1993. — Vol. 17. — P. 708−717.
  280. Van Dobbenburgh, A. Human granulocytic ehrlichiosis in Western Europe /
  281. A. Van Dobbenburgh, A.P. Van Dam, E. Fikrig // N. Engl. J. Med. 1999. -Vol. 340.-P. 1214−1216.
  282. Von Stedink, L.V. The human granulocytic ehrlichiosis agent in Swedish ticks
  283. L.V. Von Stedink, M. Gurtelschmid, H.S. Hanson et al. // Clinical Microbiology and Infection. 1997. — Vol. 3. — P. 573 — 574.
  284. Walker, D.H. Diagnosing human ehrlichioses: current status andrecommendations / D.H. Walker // Am. Soc. Microbiol. News. 2000. -№ 5. — P. 287−290.
  285. Walker, D.H. Human monocytic and granulocytic ehrlichioses discovery anddiagnosis of emerging tick-borne infections and the critical role of the pathologist / D.H. Walker, J.S. Dumler // Arch. Pathol. Lab. Med. 1997. -Vol. 121.-P. 785−791.
  286. Walker, D.H. Rickettsia rickettsii and other spotted fever group rickettsiae
  287. Wallace, B.J. Human granulocytic ehrlichiosis in New York / B.J. Wallace, G.
  288. Brady, D.M. Ackman et al. // Arch. Intern. Med. 1998. — Vol. 158. — P. 769−773.
  289. Wallach, F.R. Circulating Borrelia burgdorferi in patients with acute Lymedisease: results of blood cultures and serum DNA analysis / F.R. Wallach,
  290. A.L. Forni, J. Hariprashad et al. // J. Infect. Dis. 1993. — Vol. 168. — P. 1541−1543.
  291. Walls, J.J. Improved sensitivity of PCR for diagnosis of human granulocyticehrlichiosis using epankl genes of Ehrlichia phagocytophila group ehrlichiae / J.J. Walls et al. // J. Clin. Microbiol. — 2000. — № 1. — P.354−356.
  292. Waner, T. Detection of platelet-bound antibodies in beagle dogs after artificialinfection with Ehrlichia canis / T. Waner, I. Leykin, M. Shinitsky et al. // Vet. Immun. & Immunopathol. 2000. — Vol. 77. — P. 145 — 150.
  293. Wang, G. Molecular typing of Borrelia burgdorferi sensu lato: taxonomic, epidemiological and clinical implications / G. Wang, A.P. van Dam, I. Schwarz et al. // Clin. Microbiol. Rev. 1999. — Vol. 12. — P. 633−653.
  294. Weber, K. Cutaneuos Manifestations of Lyme Borreliosis in Europe / K.
  295. Weber // Spirochetal and Tick-Borne Diseases. 1994. — Vol. 1, № 2. — P. 57−60.
  296. Weiss, N.L. False positive seroreactivity to Borrelia burgdorferi in systemiclupus erythematosus: the value of immunoblot analysis / N.L. Weiss, V.A. Sadock, L.H. Sigal et al. // J. Lupus. 1995. — Vol. 4 (2). — P. 131−137.
  297. Whitlock, J.E. Prevalence of Ehrlichia chaffeensis (Rickettsiales:
  298. Rickettsiaeceae) in Amblyomma americanum (Acari: Ixodidae) from the Georgia coast and Barrier islands / J.E. Whitlock // J. of Med. Entomol. -Mar. 2000. Vol. 37. — № 2. — P. 276 — 280.
  299. Wilske, B. Microbiological and serological diagnosis of Lymeborreliosis / B.
  300. Wilske, V. Fingerle, U. Schulte-Spechtel // FEMS Microbiol. 2007. — Vol. 49.-P. 13−21.
  301. Wormser, G.P. Hematogenous dissemination in early Lyme disease / G.P.
  302. Wormser // Wien Klin. Wochenschr. 2006. — Vol. 118. — P. 634−637.
  303. Wormser, G.P. False-positive Lyme disease serology in human granulocyticehrlichiosis / G.P. Wormser, H.W. Horowitz, J.S. Dumler et al. // Lancet. -1996.-Vol. 347.-P. 981−982.
  304. Wormser, G.P. Impact of Clinical Variables on Borrelia burgdorferi-Specific
  305. Antibody Seropositivity in Acute-Phase Sera from Patients in North America with Culture-Confirmed Early Lyme Disease / G.P. Wormser, J. Nowakowski, R. Nadelman et al. // Clinical and Vaccine Immunology. -2008.-Vol. 15.-P. 1519−1522.
  306. Zore, A. Sensitivity of culture and polymerase chain reaction for the etiologicdiagnosis of erythema migrans / A. Zore, E. Ruzic-Sabljic, V. Maraspin et al. // Wien Klin. Wochenschr. 2002. — Vol. 114. — P. 606−609.
Заполнить форму текущей работой

Пора сдавать?