Помощь в учёбе, очень быстро...
Работаем вместе до победы

Особенности гистоархитектоники структур глазного дна при офтальмохламидиозе

Диссертация: Особенности гистоархитектоники структур глазного дна при офтальмохламидиозе
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Несмотря на то, что есть данные о возможных механизмах участия С. pneumoniae в патогенезе возрастной макулярной дегенерации, посредством антигенной стимуляции клеток пигментного эпителия, более детальные морфологические исследования, направленные на поиск возбудителя в структурах сетчатки и вызванных им морфологических изменений, нам не встречались. Между тем, установление роли хламидий в генезе… Читать ещё >

Содержание

  • ГЛАВА 1. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ. ИНФЕКЦИОННОЕ ПОРАЖЕНИЕ СТРУКТУР ЗАДНЕГО СЕГМЕНТА ГЛАЗА: КЛИНИКО-МОРФОЛОГИЧЕСКИЕ проявления.:.п
    • 1. 1. Общие признаки инфекционно-воспалительного процесса в заднем сегменте глазного яблока
    • 1. 2. Клинико-морфологические проявления инфекционного хориоретинита
    • 1. 3. Клинико-морфологические проявлен&trade- инфекционного ретинита
    • 1. 4. Поражение сечтатки и хороидеи хламидийной инфекцией
    • 1. 5. Влияние патогенетической и этиотропной терапии на исходы и морфологический субстрат инфекционных процессов в заднем сегменте глаза

Особенности гистоархитектоники структур глазного дна при офтальмохламидиозе (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Актуальность.

Хламидии — облигатные внутриклеточные бактерии, обладающие бифазным жизненным циклом, который включает метаболически неактивную, но высоко инфекционную форму — элементарное тельце и репликативную формуретикулярное тельце [90]. Согласно последнему пересмотру классификации микроорганизмов семейство Chlamidiaceae включает 9 видов бактерийвнутриклеточных паразитов животных и человека, объединяемых на основании выраженной гомологии генов рРНК.

Ранее семейство включало только один род Chlamydia, но согласно новой классификации разделено на два рода: Chlamydia и Chlamydophila. Все виды, входящие в семейство, обладают сходной структурой липополисахаридного антигена и распознаются моноклональными антителами к специфическому трисахаридному фрагменту aKdo-(2−8)-aKdo-(2−4)-aKdo [30].

В рамках семейства Chlamydia trachomatis (16 сероваров), Chlamydophila pneumoniae (1 серовар — TWAR) и Chlamydophila psittaci (1 серовар) являются возбудителями инфекционных заболеваний у человека. Наибольшее эпидемиологическое значение при этом отводят Chlamydia trachomatis и Chlamydophila pneumoniae, которые, во-первых, широко распространены среди населения и, во-вторых, склонны к развитию хронических заболеваний [30, 129].

С. trachomatis — самый распространенный сексуальнотрансмиссивный агент на планете [88]. По различным оценкам, от 5 до 15% популяции развитых стран страдают от штаммов этого возбудителя. С. trachomatis поражает уретру, шейку матки, матку и маточные трубы и обуславливает до 43% эктопических беременностей и 50% случаев тазовой воспалительной болезни у женщин [43]. Предполагается, что С. trachomatis обуславливает до 39.5% простатита у мужчин [43], при этом, кроме простаты, поражается эпидидимис и уретра [66]. Исходом хламидийной инфекции половой системы, как у женщин, так и мужчин может становиться бесплодие [188, 183]. Также С. trachomatis играет большую роль в этиологии заболеваний органа зрения: по последним оценкам Всемирной Организации Здравоохранения, не менее 5.9 миллионов человек в мире потеряли зрение из-за трахомы, что составляет примерно 15% всех случаев слепоты. Кроме того, еще около 600 миллионов человек в странах Африки, Ближнего Востока, Центральной и Южной Америки, Азии, Австралии, эндемичных по трахоме, инфицированы этим возбудителем [133].

С. pneumoniae считают широко распространенным возбудителем заболеваний респираторного тракта. Сероэпидемиологические исследования указывают, что С. pneumoniae ответственна за 20% внегоспитальных пневмоний и 5% бронхитов [124]. Серопозитивность к данному возбудителю достигает 70% среди лиц старшего возраста [96].

Детальное изучение биологических свойств хламидий обнаружило способность этих возбудителей избегать воздействия иммунитета и элиминации из организма хозяина, а также переходить в персистирующую форму [151]. Указанные особенности приводят к развитию хронических воспалительных процессов в месте локализации возбудителя и, как следствие, альтерации и ремоделированию ткани. Этим, а также способностью к гематогенной диссеминации в составе макрофагов обусловлено, появление, начиная с конца 80-х годов XX века, данных об участии хламидийной инфекции в ряде хронических заболеваний, в первую очередь, сердечно-сосудистой (атеросклероз) и респираторной системы (бронхиальная астма) [73]. Сегодня эта роль хламидий считается доказанной, хотя вопросы патогенеза до конца не изучены. В то же время появляются данные о корреляции хламидийной инфекции с дегенеративными заболеваниями центральной нервной системы (болезнь Альцгеймера, рассеянный склероз) и заболеваниями суставов (артриты в рамках синдрома Рейтера) [87].

В офтальмологии новые данные говорят о возможности поражения С. pneumoniae и С. trachomatis стрктур заднего сегмента глаза [24, 25, 26, 27, 111]. Так, морфологические исследования обнаруживают С. pneumoniae в составе неоваскулярных мембран у пациентов с возрастной макулярной дегенерацией [111]. Кроме того, липополисахаридный антиген хламидий обнаруживают в 74% образцов СРЖ и 90% конъюнктивальных соскобов у пациентов с регматогенной отслойкой сетчатки [3].

В пользу роли инфекционных агентов при этих заболеваниях говорят также данные об участии воспаления в патогенезе ВМД и регматогенной отслоки сетчатки. Изменения активности системы комплемента, в частности фактора Н, и участие в патогенезе возрастной макулярной дегенерации макрофагальной системы, указывает на воспалительную природу заболевания [168]. Получены данные о существенной роли местного хронического воспаления в биогенезе друз [36]. Иммунологические исследования при регматогенной отслойке сетчатки также указывают на протекание воспалительных процессов [1].

Несмотря на то, что есть данные о возможных механизмах участия С. pneumoniae в патогенезе возрастной макулярной дегенерации, посредством антигенной стимуляции клеток пигментного эпителия [80], более детальные морфологические исследования, направленные на поиск возбудителя в структурах сетчатки и вызванных им морфологических изменений, нам не встречались. Между тем, установление роли хламидий в генезе дистрофических изменений заднего сегмента глаза позволит не только расширить представления о патогенезе возрастной макулярной дегенерации и отслойки сетчатки, но и, возможно, заподозрить участие хламидийной инфекции в других заболеваниях заднего сегмента глаза.

При инфекционных процессах в заднем сегменте глаза одним из ключевых патогенетических звеньев является поражение пигментного эпителия сетчатки (ПЭС), что наблюдают, например, при герпетическом ретините [92]. При этом обнаружение возбудителей в клетках ПЭС коррелирует с тропностью агентов к культуре клеток in vitro.

Все вышесказанное диктует необходимость проведения исследования, направленного на изучение способности С. pneumoniae и С. trachomatis вызывать изменения в структурах заднего сегмента глаза и их морфологического субстрата. Изучение возможности поражения ПЭС in vitro данными возбудителями позволит не только подтвердить морфологические данные, но и детализировать патогенез инфекционного процесса.

Цель исследования — изучить гистоархитектонику структур глазного дна при офтальмохламидиозе.

Задачи.

1. Определить клинико-морфологические особенности хламидийного поражения заднего сегмента глаза.

2. Установить возможную локализацию возбудителя в тканях заднего сегмента глаза.

3. Изучить возможность и морфологические признаки персистирования возбудителя в структурах заднего сегмента глаза.

4. Изучить гематогенную диссеминацию возбудителей в структуры глазного дна.

5. Определить возможность и особенности поражения пигментного эпителия сетчатки C. pneumoniae и C. trachomatis in vitro.

Научная новизна.

Впервые исследована возможность поражения хламидийной инфекцией нейроэпителия и пигментного эпителия сетчатки, сосудистой оболочки. Изучены морфологические проявления персистирования возбудителя в структурах заднего сегмента глаза и оценено клиническое значение этих проявлений. Впервые дана оценка проявлений хламидийного поражения структур заднего сегмента глаза с установлением клинико-морфологической корреляции и продемонстрирована возможность гематогенной диссеминации экстраокулярно локализованного возбудителя в структуры заднего сегмента глаза. Кроме того, в работе оценены возможности прямой иммунофлюоресценции (ПИФ) in situ в диагностике офтальмохламидиоза.

Практическая значимость.

Изученные в эксперименте изменения сетчатки и сосудистой оболочки при офтальмохламидйозе соответствуют клиническим наблюдениям и позволяют расширить представления о патогенезе заболеваний заднего сегмента глаза.

Полученные данные указывают на потенциальную роль хламидийной инфекции в развитии некоторых дегенеративно-дистрофических заболеваний органа зрения, таких, как отслойка сетчатки и ВМД. Доказанная возможность гематогенной диссеминации объясняет корреляционную связь между серопозитивностью к отдельным видам хламидий и изменениями витреоретинохороидального комплекса. Продемонстрирована потенциальная возможность использования ПИФ in situ в клинической практике в процессе обследования и лечения пациентов с подозрением на хламидийное поражение структур заднего сегмента глаза.

Положения, выносимые на защиту.

1. Структуры глазного дна восприимчивы к хламидийной инфекции, при их поражении последовательно происходят, характерные для острого и хронического воспалительного процесса, клинико-морфологические изменения тканей. Диапазон этих процессов может варьировать от ярко выраженных аутоиммунных увеитов до стертых субклинических ретинитов.

2. В структурах заднего сегмента глаза хламидийная инфекция способна поражать клетки нейроэпителия сетчатки, пигментные эпителиоциты, клетки сосудистой оболочки, что подтверждено методом ПИФ in situ.

3. Для патогенеза хламидийного поражения структур заднего сегмента глаза характерна гематогенная диссеминация и персистирование возбудителей, что соответствует биологическим свойствам С. pneumoniae и С.trachomatis.

Апробация работы.

Материалы диссертации докладывались и обсуждались на пленарном заседании военно-научного общества курсантов и слушателей Военно-медицинской академии им С. М. Кирова (Санкт-Петербург, 12 апреля 2010 г.) — V Всероссийской научной конференции молодых ученых «Актуальные проблемы офтальмологии — 2010» (Москва, 15 июня 2010 г.) — научно-практической конференции «Опухоли и опухолеподобные заболевания органа зрения» (Москва, 1−3 ноября 2010 г.) — XI Всероссийской научно-практической конференции «Федоровские чтения» (Москва, 21−24 июня 2011 г.).

По материалам исследований опубликовано 11 статей и тезисов, из них 7 в изданиях, рекомендованных ВАК РФ.

Личное участие автора.

Личное участие автора исследования заключалось в: моделировании хламидийной инфекции у экспериментальных животныхнаблюдении за инфицированными животнымивзятии материала для проведения микробиологического и гистологического исследованийвыполнении гистологических исследованийанализе морфологических изменений и клинических признаков инфекционного процессасоздании клеточной культуры пигментного эпителия сетчатки кроликамоделировании хламидийной инфекции клеточной культурыанализе изменений клеточной культуры под действием хламидийной инфекциистатистической обработке результатов морфометрических исследований.

Объем и структура работы.

ВЫВОДЫ.

1. Как С. trachomatis, так и С. pneumoniae способны вызывать поражение структур заднего сегмента глаза, которое может проявляться различными по тяжести инфекционно-воспалительными процессами, варьирующими от субклинических ретинитов до тяжелых увеитов с аутоиммунным компонентом. При этом независимо от клинического варианта процесса всегда формируется морфологический субстрат с нарушением гистоархитектоники витреоретинохороидального комплекса.

2. Инфицирование C. pneumoniae и С. trachomatis структур заднего сегмента глаза сопровождается неспецифическими признаками воспаления, появлением ретинальных гидропических очагов, дистрофических хориоретинальных очагов, изменениями пигментного эпителия в случае легких процессов и признаками интенсивного воспаления с аутоиммунным компонентном — в случае тяжелых процессов.

3. Антигены С. trachomatis и C. pneumoniae при офтальмохламидиозе можно обнаружить в сетчатке, пигментном эпителии и клетках сосудистой оболочки, используя ПИФ in situ.

4. В течение 128 суток после инфицирования возбудителя можно обнаружить в структурах заднего сегмента глаза, на фоне значительного снижения клинических проявлений инфекционного процесса и развития дистрофических изменений тканей.

5. Обнаружение возбудителей в заднем сегменте глаза после интраперитонеального введения культур C. pneumoniae и С. trachomatis свидетельствует о возможности гематогенной диссеминации данных возбудителей из первичного очага в структуры глазного дна.

6. Инфицирование клеток пигментного эпителия сетчатки в культуре различными видами хламидий сопровождается цитопатическими эффектами, которые могут обеспечивать патогенетические механизмы поражения структур заднего сегмента глаза при экспериментальном офтальмохламидиозе.

ПРАКТИЧЕСКИЕ РЕКОМЕНДАЦИИ Для определения хламидийной этиологии поражения сетчатки может быть использован метод ПИФ in situ. Метод может применяться в клинической практике для исследования интраоперационного и диагностического материала стекловидного тела, сетчатки, пигментного эпителия и сосудистой оболочки. Возможны отрицательные результаты применения метода, которые при наличии серопозитивности сыворотки крови не должны исключать хламидийную природу поражения витреоретинального комплекса.

Показать весь текст

Список литературы

  1. , М.Т. Уровни цитокинов в сыворотке крови и субретинальной жидкости при регматогенной отслойке сетчатки / М. Т. Азнабаев, В. К. Суркова, В. Б. Мальханов, О. В. Вавилова, Н. Е. Шевчук // Вестник офтальмологии. 2006. — № 3. — с. 25−27.
  2. , Э.В. О частоте выявления хламидийной инфекции при регматогенной отслойке сетчатки / Э. В. Бойко, A.JI. Позняк, B.C. Агеев // Вестник офтальмологии. 2008. — № 5. — с. 52−55.
  3. Бойко, Э. В. Хламидийные поражения органа зрения: клиника, диагностика, лечение / Э. В. Бойко, A.JI. Позняк, B.C. Агеев // Вестник офтальмологии. -2008.-№ 1.-с. 50−53.
  4. , Э.В. О роли хламидийной инфекции в развитии синдрома сухого глаза / Э. В. Бойко, A.JI. Позняк, В. Ф. Черныш, B.C. Агеев // Вестник офтальмологии. 2008. — № 4. — с. 16−19.
  5. , Е.А. Характеристика осложнений туберкулезного увеита / Е. А. Бурылова // Фтизиатрия и пульмонология. 2011. — № 2. — с. 189−190.
  6. Вит В. В. Строение зрительной системы человека / В. В. Вит. Одесса: Астропринт, 2003. — 664 с.
  7. , Г. А. Опыт лечения отслоек сетчатки протекающих на фоне периферического увеита / Г. А. Голушков, С. Ю. Евсеев, В. Ю. Максимов, О. Г. Дмитриева // Клиническая офтальмология. 2003. — № 4. — с. 155−156.
  8. , Т.И. Оппортунистические инфекции у детей (вопросы диагностики, клиники и лечения) / Т. И. Долгих, Ф. В. Носкова. Омск: ОГМА, 1999. — 99 с.
  9. Ю.Лобзин, Ю. А. Хламидийные инфекции / Ю. А. Лобзин, Ю. И. Ляшенко, А. Л. Позняк. Санкт-Петербург: Фолиант, 2003. — 400 с.
  10. П.Лысенко, А. И. Роль Chlamydia pneumoniae в повреждении эндотелиальных клеток аорты человека при атеросклерозе / А. И. Лысенко, Н. А. Соловьева // Архив патологии. 2010. — № 2. — с. 21−25.
  11. И.Ю. Клинические формы офтальмохламидиоза у взрослых и детей, оптимизация диагностики и методов лечения: дисс. кан. мед. наук.: 14.01.07 /Межевова Ирина Юрьевна. -М., 2005. 182 с.
  12. , А.А. Патология периферической нервной системы хламидийной природы / А. А. Михайленко, Л. С. Онищенко, И. В. Нуралова, О. В. Борзенко // Неврологический вестник им. В. М. Бехтерева. 1996. — Т.28, Вып. 1−2. — с.5−8.
  13. , И.Е. Задний токсоплазменный увеит клиническая характеристика, иммунологические особенности патогенеза / И. Е. Панова, С. Н. Теплова, Е. Б. Лапина, Н. Г. Варнавская, О. Н. Авдеева // Офтальмологические ведомости. -2009.-Т.2, № 3,-с. 4−10.
  14. , Ю.Г. Патоморфологические изменения в легких при туберкулезе у умерших от ВИЧ-инфекции на стадии СПИДа / Ю. Г. Пархоменко, В. В. Ерохин, Ю. Р. Зюзя, Л. Н. Лепеха, О. А. Тишкевич // Архив патологии. 2007. -№ 3. — с. 26−28.
  15. , Н.А. Иммунология глазной патологии / Н. А. Пучковская, Н. С. Шульгина, М. Г. Миннеев. Москва: Медицина, 1983. — 160 с.
  16. , А.В. К вопросу о хламидийном поражении глаз / А. В. Семенов, B.C. Чирский, Н. В. Семенов, С. А. Никулин, И. Н. Околов // Офтальмохирургия. -2005. -№ 2. -с. 46−47.
  17. , А.Д. Хламидийные поражения нервной системы / А. Д. Серопегин, М. М. Одинак, А. А. Михайленко // Военно-медицинский журнал. 2006. -№ 11.-с. 36−41.
  18. , Е.И. Эффективность этиотропной терапии при туберкулезе глаз и пути ее повышения / Е. И. Устинова, C.JI. Ляпин // Офтальмологические ведомости. 2009. — Т.2, № 3. — С. 63−68.
  19. , Т.В. К вопросу о ранней диагностике ЦМВ-ретинита у больных с ВИЧ-инфекцией / ТВ. Хижняк, Ю. С. Астахов, А. Г. Рахманова // Офтальмологические ведомости. 2011. — Т.4, № 2. — с. 39−45.
  20. , В.А., Характеристика перинатальных поражений внутренних органов, вызванных Chlamydia trachomatis / В. А. Цинзерлинг, Н. В. Семенов, Е. Ф. Горбунов // Архив патологии. 2007. — № 3. — с. 33−36.
  21. , О.Б. Туберкулез глаз / О. Б. Ченцова. Москва: Медицина, 1990. -256 с.
  22. , О.Б. Клиника, диагностика и лечение офтальмохламидиоза: пособие для врачей / О. Б. Ченцова, И. Ю. Межевова. Москва: Медицина, 2003. — 28 с.
  23. , О.Б. Новые гематогенные формы офтальмохламидиоза и способы их лечения / О. Б. Ченцова, И. Ю. Межевова // Актуальные проблемы офтальмологии: материалы симпозиума. 2003. — 433 с.
  24. , О.Б. Новые клинические формы и диагностика офтальмохламидиоза / О. Б. Ченцова, И. Ю. Межевова // Вестник офтальмологии. 2003. — № 5. -с. 25−28.
  25. , Ф.Е. Задний сифилитический увеит / Ф. Е. Шадричев, И. Г. Голец, Е. Б. Шкляров, Н. Н. Григорьева // Офтальмологические ведомости. 2009. -Т.2., № 3. — с. 69−74.
  26. , Г. В. Взаимосвязь клинических и лабораторных показателей при периферическом увейте / Г. В. Шкребец, Г. И. Должич // Вестник офтальмологии. 2008. — № 4. — с. 19−22.
  27. ЗО.Эйделыытейн, И. А. Фундаментальные изменения в классификации хламидий и родственных им микроорганизмов порядка Chlamydiales / И. А. Эйделыптейн // Клиническая микробиология и антимикробная химиотерапия. 1999. -Т.1, № 1. — с. 5−11.
  28. Abu El-Asrar, A.M. Tuberculous Uveitis / A.M. Abu El-Asrar, M. Abouammoh, H.S. Al-Mezaine // Middle East African Journal of Ophthalmology. 2009. -Vol. 16(4).-p. 188−201.
  29. Aizman, A. Treatment of acute retinal necrosis syndrome with oral antiviral medications / A. Aizman, M.W. Johnson, S.G. Elner // Ophthalmology. 2007. -Vol. 114(2).-p. 307−312.
  30. Almony, A. Macular optical coherence tomography findings in progressive outer retinal necrosis / A. Almony, M.S. Dhalla, L. Feiner, G.K. Shah // Canadian Journal of Ophthalmology. 2007. — Vol. 42(6). — p. 881.
  31. Alvarez, G.G. Ocular tuberculosis: diagnostic and treatment challenges / G.G. Alvarez, V.R. Roth, W. Hodge // International Journal of Infectious Diseases. -2009. Vol. 13(4). — p. 432−435.
  32. Ando, F. Platelet function in bilateral acute retinal necrosis / F. Ando, M. Kato, S. Goto // American Journal of Ophthalmology. 1983. -Vol. 96. — p. 27−32.
  33. Angevine, D.M. Experimental ocular tuberculosis in normal and immunized rabbits / D.M. Angevine, R.W. Huntington // American Journal of Pathology. 1941. -Vol. 17(2).-p. 155−164.
  34. Babu, B.M. Intermediate uveitis / B.M. Babu, S.R. Rathinam // Indian Journal of
  35. Ophthalmology. 2010. — Vol. 58(1). — p. 21−27.i
  36. Bachmaier, K. Chlamydia and antigenic mimicry / K. Bachmaier, J.M. Penninger // Current Topics in Microbiology and Immunology. 2005. — № 296. — p. 153−163.
  37. Banker, A.S. Posterior segment manifestations of human immunodeficiency virus/acquired immune deficiency syndrome. / A.S. Banker // Indian Journal of Ophthalmology. -2008. Vol. 56(5). — p. 377−383.
  38. Bloom, J.N. The diagnosis of cytomegalovirus retinitis / J.N. Bloom, A.G. Palestine //Annals of Internal Medicine. 1988. — Vol. 109(12). — p. 963−969.
  39. Blumenkranz, M.S. Principles and practice of ophthalmology, clincal practice: acute retinal necrosis / M.S. Blumenkranz, J.S. Duker, D.J. D’Amico, D.M. Albert, F.A. Jackobiec. Philadelphia: WB Saunders, — 1994. — 3800 p.
  40. Blumenkranz, M.S. Treatment of the acute retinal necrosis syndrome with intravenous acyclovir / M.S. Blumenkranz, W.W. Culbertson, J.G. Clarkson, R. Dix H Ophthalmology. 1986. — Vol. 93. — p. 296−300.
  41. Bodaghi, B. Ocular tuberculosis / B. Bodaghi, P. LeHoang // Current Opinion in Ophthalmology. 2000. — № 11. — p. 442148.
  42. Bonnoli, A.A., Toxoplasmosis / A.A. Bonfioli, F. Orefice // Seminars in Ophthalmology. -2005. Vol. 20(3). — p. 129−141.
  43. Bosch-Driessen, L.H. Retinal detachment in ocular toxoplasmosis / L.H. Bosch-Driessen, S. Karimi, J.S. Stilma, A. Rothova // Ophthalmology. 2000. — Vol. 107(1).-p. 36−40.
  44. Brown, D. Characterization of an endogenous metalloproteinase in human vitreous / D. Brown, H. Hamdi, S. Bahri, M.C. Kenney // Current Eye Research. 1994. -Vol. 13(9).-p. 639−647.
  45. Butler, N.J. Ocular toxoplasmosis II: clinical features, pathology and management / N.J. Butler, J.M. Furtado, K.L. Winthrop, J.R. Smith // Clinical and Experimental Ophthalmology. -2013. Vol. 41(1). — p. 95−108.
  46. Cai, G. Interleukin-18 (IL-18) enhances innate IL-12-mediated resistance to Toxoplasma gondii / G. Cai, R. Kastelein, C.A. Hunter // Infection and Immunity. -2000. Vol. 68(12). — p. 6932−6938.
  47. Carney, M. Acute retinal necrosis / M. Carney, G. Peyman, M. Goldberg, K. Packo, J. Pulido, D. Nicholson // Retina. 1986. — Vol. 6(3). — p. 168.
  48. Cassoux, N. Current status of retinal detachment in AIDS patients / N. Cassoux, B. Bodaghi, M. Lautier-Frau, C. Fardeau, P. Lehoang // Journal Francais D Ophtalmologie. -2000. Vol. 23(10). -p. 1031−1034.
  49. Chan, C.C. Pathology of experimental autoimmune uveoretinitis in mice / C.C. Chan, R.R. Caspi, M. Ni, W.C. Leake, B. Wiggert, G.J. Chader, R.B. Nussenblatt // The Journal of Immunology. 1990. — Vol. 3(3). — Vol. 247−255.
  50. Charles, E. The SAG1 Toxoplasma gondii surface protein is not required for acute ocular toxoplasmosis in mice / E. Charles, M.C. Callegan, I.J. Blader // Infection and Immunity. 2007. — Vol. 75(4). — p. 2079−2083.
  51. Chen, H.P. Acute retinal necrosis syndrome: clinical manifestations and visual outcomes / H.P. Chen, H.K. Kuo, S.H. Tsai, Y.J. Chen, M.L. Kao // Chang Gung Medical Journal. 2004. — № 27(3). — p. 193−200.
  52. Chung, Y.M. Macular subretinal neovascularization in choroidal tuberculosis / Y.M. Chung, T.S. Yeh, S.J. Sheu // Annals of Ophthalmology. 1989. — Vol. 21. -p. 225−229.
  53. Clarkson, J.G. Retinal detachment following the acute retinal necrosis syndrome / J.G. Clarkson, M.S. Blumenkranz, W.W. Culbertson, H.W. Flynn Jr, M.L. Lewis // Ophthalmology. 1984. — Vol. 91(12). -p. 1665−1668.
  54. Commodaro, A.G. Ocular toxoplasmosis: an update and review of the literature / A.G. Commodaro, R.N. Belfort, L.V. Rizzo, C. Muccioli, C. Silveira, M.N. Burnier Jr., R. Belfort Jr. // Memorias do Instituto Oswaldo Cruz. 2009. — Vol. 104(2). -p. 345−350.
  55. Culbertson, W.W. The acute retinal necrosis syndrome. Part 2: Histopathology and etiology / W.W. Culbertson, M.S. Blumenkranz, H. Haines, D.M. Gass, K.B. Mitchell, E.W. Norton // Ophthalmology. 1982. — Vol. 89(12). — p. 1317−1325.
  56. Culbertson, W.W. Acute retinal necrosis / W.W. Culbertson, J.G. Clarkson, M. Blumenkranz, M.L. Lewis // American Journal of Ophthalmology. 1983. — Vol. 96.-p. 683−685.
  57. Culbertson, W.W. Acute retinal necrosis and similar retinitis syndromes / W.W. Culbertson, S.S. Atherton // International Ophthalmology Clinics. 1993. — Vol. 33. -p. 129−143.
  58. Cunningham, K.A. Male genital tract chlamydial infection: implications for pathology and infertility / K.A. Cunningham, K.W. Beagley // Biology of Reproduction. 2008. — Vol. 79(2). — p. 180−189.
  59. Davidson, M.G. A feline model of ocular toxoplasmosis / M.G. Davidson, M.R. Lappin, R.V. English, M.B. Tompkins // Investigative Ophthalmology and Visual Science. 1993. — Vol. 34(13). -p. 3653−3660.
  60. Denkers, E.Y. Regulation and function of T-cell-mediated immunity during Toxoplasma gondii infection / E.Y. Denkers, R.T. Gazzinelli // Clinical Microbiology Reviews. 1998. — Vol. 11(4). — p. 569−588.
  61. Dhingra, N. Inflammatory choroidal neovascular membrane in posterior uveitis-pathogenesis and treatment / N. Dhingra, S. Kelly, M.A. Majid, C.B. Bailey, A.D. Dick // Indian Journal of Ophthalmology. 2010. — Vol. 58(1). — p. 3−10.
  62. Drake-Casanova, P. HIV retinal vasculitis / P. Drake-Casanova, J.P. Moreno-Arrones, M. Gorrono Echebarria, I. Dapena-Sevilla, J. Pareja-Esteban, E. Vleming-Pinilla // Archivos de la Sociedad Espanola de Oftalmologia. 2010. — Vol. 85(1). -p. 32−34.
  63. Duan, Y. Dissemination and replication of MCMV after supraciliary inoculation in immunosuppressed BALB/c mice / Y. Duan, Z. Ji, S.S. Atherton // Investigative Ophthalmology and Visual Science. 1994. — Vol. 35(3). — p. 1124−1131.
  64. Eckert, G.U.Optic nerve changes in ocular toxoplasmosis / G.U. Eckert, J. Melamed, B. Menegaz // Eye. Vol. 21(6). — p. 746−751.
  65. Elias, J.A. Airway remodeling in asthma / J.A. Elias, Z. Zhu, G. Chupp, R.J. Homer //Journal of Clinical Investigation. 1999. — Vol. 104(8). — p. 1001−1006.
  66. Fisher, J.P. The acute retinal necrosis syndrome. Part 1: Clinical manifestations / J.P. Fisher, M.L. Lewis, M.S. Blumenkranz, W.W. Culbertson, H.W. Jr. Flynn, J.G. Clarkson, J.D. Gass, E.W. Norton // Ophthalmology. 1982. — Vol. 89(12). -p. 1309−1316.
  67. Flanagan, D.W. The origin of macular cysts in diabetic maculopathy / D.W. Flanagan // British Journal of Ophthalmology. 1995. — Vol. 79(7). — p. 623−624.
  68. Freeman, W.R. Retinal detachment in cytomegalovirus retinitis: should our approach be changed / W.R. Freeman // Retina. 1999. — Vol. 19(4). — p. 271−273.
  69. Friedman, S.M. Varicella-zoster virus retinitis as the initial manifestation of the acquired imunodeficiency syndrome / S. M Friedman., C.E. Margo, B.L. Connelly // American Journal of Ophthalmology. 1994. — Vol. 117(4). — p. 536−538.
  70. Fujimoto, T. Chlamydia pneumoniae enhances choroidal neovascularization via Toll-like Receptor 2 in the retinal pigment epithelium / T. Fujimoto- K.H. Sonoda- K. Hijioka // Investigative Ophthalmology and Visual Science. 2010. — Vol. 51. -p. 4694−4702.
  71. Gagliuso, D.J. Ocular toxoplasmosis in AIDS patients / D.J. Gagliuso, S.A. Teich, A.H. Friedman, J. Orellana // Transactions of the American Ophthalmological Society. 1990. — Vol. 88. — p. 63−86.
  72. Galetta, K.M. Optical coherence tomography (OCT): imaging the visual pathway as a model for neurodegeneration / K.M. Galetta, P.A. Calabresi, E.M. Frohman, L.J. Balcer//Neurotherapeutics. -2011. Vol. 8(1). — p. 117−132.
  73. Gartry, D.S. Acute retinal necrosis syndrome / D.S. Gartry, D.J. Spalton, A. Tilzey, P.G. Hykin // British journal of Ophthalmology. 1991. — Vol. 75. — p. 292−297.
  74. Gass, J.D. Biomicroscopic and histopathologic considerations regarding the feasibility of surgical excision of subfoveal neovascular membranes / J.D. Gass // American Journal of Ophthalmology. 1994. — Vol. 118(3). — p. 285−298.
  75. Gazzinelli, R. Simultaneous depletion of CD4+ and CD8+ T lymphocytes is required to reactivate chronic infection with Toxoplasma gondii / R. Gazzinelli, Y. Xu, S. Hieny, A. Cheever, A. Sher // Journal of Immunology. 2002. — Vol. 149(1). -p. 175−180.
  76. Geng, S. Cytomegalovirus retinitis associated with acquired immunodeficiency syndrome / S. Geng, J.J. Ye, J.L. Zhao, T.S. Li, Y. Han // Chinese Medical Journal (English).-2011.-Vol. 124(8).-p. 1134−1138.
  77. Gerbase, A.C. Global. Epidemiology of Sexually Transmitted Diseases /A.C. Gerbase, J.T. Rowley, T.E. Mertens // Lancet. 1998. — № 351 (Supplement 1). -p. 2−4.
  78. Ghasemi Barghi, R. A Review on Ophthalmic Manifestations of Brucellosis and Reporting a Case of Ophthalmic Brucellosis / R. Ghasemi Barghi, H. Meraat, A.A. Pahlevan // Iranian Red Crescent Medical Journal. 2011. — Vol. 13(5). — p. 352 353.
  79. Green, W.R. Pars planitis / W.R. Green, M.C. Kincaid, R.G. Michels // Transnational Ophthalmology Society of the UK. 1981. — Vol. 101. — p. 361−367.
  80. Greven, C.M. Progressive outer retinal necrosis secondary to varicella zoster virus in acquired immune deficiency syndrome / C.M. Greven, J. Ford, C. Stanton, M.
  81. Shogreen, S. Feldman, S. Pegram, M.M. Slusher // Retina. 1995. — Vol. 15(1). -p. 14−20.
  82. Grossniklaus, H.E. Cytomegalovirus retinitis and optic neuritis in acquired immune deficiency syndrome. Report of a case / H.E. Grossniklaus, K.E. Frank, R.L. Tomsak//Ophthalmology. 1987. — Vol. 94(12). — p. 1601−1604.
  83. Gupta, G. Posterior uveitis secondary to syphilis / G. Gupta, D. Pyatetsky // Clinical Medicine & Research. 2009. — Vol. 7(3). — p. 106.
  84. Gupta, V. Intraocular Tuberculosis—An Update / V. Gupta, A. Gupta, N.A. Rao // Survey of Ophthalmology.-2007.-Vol. 52(6).-p. 561−587.
  85. Hammerschlag, M.R. The Role of Chlamydia in Upper Respiratory Tract Infections / M.R. Hammerschlag // Current Infectious Disease Reports. 2000. — Vol. 2(2). -p. 115−120.
  86. Hay, J. Toxoplasmic Retinochoroiditis in the Hamster. Letter to the Editor / J. Hay, G.N. Button // Investigative Ophthalmology and Visual Science. 1996. — Vol. 37(6).-p. 951.
  87. Hayashi, K. Studies of ocular murine cytomegalovirus infection / K. Hayashi, I. Kurihara, Y. Uchida // Investigative Ophthalmology and Visual Science. 1985. -Vol. 26.-p. 486−493.
  88. Hofmaier, F. Changes in matrix metalloproteinase network in a spontaneous autoimmune uveitis model / F. Hofmaier, S.M. Hauck, B. Amann, R.L. Degroote, C.A. Deeg // Investigative Ophthalmology and Visual Science. 2011. — Vol. 52(5). -p. 2314−2320.
  89. Holland, G.N. Executive Committee of the American Uveitis Society: Standard diagnostic criteria for the acute retinal necrosis syndrome / G.N. Holland // American Journal of Ophthalmology. 1994. — Vol. 117(5). — p. 663−667.
  90. Holland, G.N. Ocular toxoplasmosis: a global reassessment. Part II: disease manifestations and management / G.N. Holland // American Journal of Ophthalmology. 2004. — Vol. 137(1). -p. 1−17.
  91. Holland, G.N. Ocular infection & immunity. / G.N. Holland, J.S. Pepose, K.R. Wilhelmus. St. Louis: Mosby-Year Book, 1996. — p. 1552.
  92. Howes, E.L.Jr. Cellular and vascular responses in acute experimental ocular inflammation / E.L.Jr. Howes, P.W. Cole, T.M. Adair, V.K. Cruse, M. Pollycove // Investigative Ophthalmology and Visual Science. 1994. — Vol. 35(12). — p. 40 314 038.
  93. Jacobson, M.A. Treatment of Cytomegalovirus Retinitis in Patients with the Acquired Immunodeficiency Syndrome / M.A. Jacobson // New England Journal of Medicine. 1997. — Vol. 337. — p. 105−114.
  94. Johnston, W.H. Recurrence of presumed varicella-zoster virus retinopathy in patients with the acquired imunodeficiency syndrome / W.H. Johnston, G.N. Holland, R.E.J. Jr. Engstron // American Journal of Ophthalmology. 1993. — Vol. 116.-p. 42−50.
  95. Jumper, J.M. Exudative retinal detachment and retinitis associated with acquired syphilitic uveitis / J. M Jumper, R. Machemer, R.P. Gallemore, G.J. Jaffe // Retina. -2000. Vol. 20(2). — p. 190−194.
  96. Jun, C.D.Nitric oxide mediates the toxoplasmastatic activity of murine microglial cells in vitro / C.D. Jun, S.H. Kim, C.T. Soh, S.S. Kang, H.T. Chung // Immunological Investigation. 1993. — Vol. 22(8). — p. 487−501.
  97. Kempen, J.H. Retinal Detachment Risk in Cytomegalovirus Retinitis Related to the Acquired Immunodeficiency Syndrome / J.H. Kempen, D.A. Jabs, J.P. Dunn, S.K. West, J. Tonascia // Archives of Ophthalmology. 2001. — Vol. 119(1). -p. 33−40.
  98. Kenyon, K.R. Fibroglial proliferation in pars planitis / K.R. Kenyon, J.E. Pederson, W.R. Green // Transnational Ophthalmology Society of the UK. 1975. -Vol. 95.-p. 391−397.
  99. Kim, K. Toxoplasma: the next lOOyears / K. Kim, L.M. Weiss // Microbes and Infection. -2008. Vol. 10(9). — p. 978−984.
  100. Konda, B.R. Role of retinal pigment epithelium in the development of experimental autoimmune uveitis / B.R. Konda, G. Pararajasegaram, G.S. Wu, D. Stanforth, N.A. Rao // Investigative Ophthalmology and Visual Science. 1994. -Vol. 35(1).-p. 40−47.
  101. Kuppermann, B.D. Liposome-encapsulated (S)-l-(3-hydroxy-2-phosphonylmethoxypropyl)cytosine for long-acting therapy of viral retinitis / B.D.
  102. Kupperaiann, K.K. Assil, C. Vuong, G. Besen, CA. Wiley, E. De Clercq, G. Bergeron-Lynn, J.D. Connor, M. Pursley, D. Munguia, W.R. Freeman // The Journal of Infectious Diseases. 1996. — Vol. 173(1). — p. 18−23.
  103. Lau, C.H. Acute retinal necrosis features, management, and outcomes / C.H. Lau, T. Missotten, J. Salzmann, S.L. Lightman // Ophthalmology. 2007. — Vol. 114(4). — p. 756−762.
  104. Lightman, S. Effect of lymphocytic infiltration on the blood-retinal barrier in experimental autoimmune uveoretinitis / S. Lightman, J. Greenwood // Clinical & Experimental Immunology. 1992. — Vol. 88. — p. 473−477.
  105. Malinowski, S.M. Long-term visual outcome and complications associated with pars planitis/ S.M. Malinowski, J.S. Pulido, J.C. Folk // Ophthalmology. 1993. -Vol. 100(6).-p. 818−824.
  106. Marrie, T.J. Chlamydia species as a cause of community-acquired pneumonia in Canada / T.J. Marrie, R.W. Peeling, T. Reid, E. De Carolis // European Respiratory Journal 2003. — Vol. 21(5). — p. 779−784.
  107. Martin, D.F. Treatment of cytomegalovirus retinitis with an intraocular sustained-release ganciclovir implant: a randomized controlled clinical trial / D.F. Martin, D.J. Parks, S.D. Mellow // Archives of Ophthalmology. 1994. — Vol. 112. — p. 15 311 539
  108. Martin, N.F. Cystoid macular edema as the primary sign of syphilis /N.F. Martin // American Journal of Ophthalmology. 1979. — Vol. 88. — p. 28−31.
  109. McLeod, R. Immunogenetics in pathogenesis of and protection against toxoplasmosis / R. McLeod, J. Jonson, R. Estes, D. Mack // Current Topics in Microbiology and Immunology. 1996. — Vol. 219. — p. 95−112.
  110. Miyashita, N. In vitro and in vivo activities of AM-1155, a new fluoroquinolone, against Chlamydia spp. / N. Miyashita, Y. Niki, T. Kishimoto, M. Nakajima, T. Matsushima // Antimicrobial Agents and Chemotherapy. 1997. — Vol. 41(6). -p. 1331−1334.
  111. Monnet, D. Optical coherence tomography in ocular toxoplasmosis / D. Monnet, K. Averous, E. Delair, A.P. Brezin // International Journal of Medical Sciences. -2009.-Vol. 6(3).-p. 137−138.
  112. Montoya, J.G. Toxoplasmic chorioretinitis in the setting of acute acquired toxoplasmosis / J.G. Montoya, J.S. Remington // Clinical Infectious Diseases. -1996. Vol. 23(2). — p. 277−282.
  113. Morimura, Y. Tuberculin skin testing in uveitis patients and treatment of presumed intraocular tuberculosis in Japan / Y. Morimura, A.A. Okada, S. Kawahara // Ophthalmology. 2002. — Vol. 109. — p. 851−857.
  114. Negrel, A.D. World Health Organization alliance for the elimination of trachoma / A.D. Negrel, S.P. Mariotti, B. Thylefors // Review of International Trachoma. -1997.-Vol. 74.-p. 109−117.
  115. Nussenblatt, R.B. Ocular toxoplasmosis. An old disease revisited / R.B. Nussenblatt, R. Jr. Belfort // 1994. Journal of the American Medical Association. -Vol. 271(4).-p. 304−307.
  116. Obuchowska, I. Choroidal detachment—pathogenesis, etiology and clinical features. I. Obuchowska, Z. Mariak // Klinika Oczna. 2005. -Vol. 107(9). -p. 529−532.
  117. O’Malley, P.F. Peripheral cystoid degeneration of the retina. Incidence and distribution in 1,000 autopsy eyes / P.F. O’Malley, R.A. Allen // Archives of Ophthalmology. 1967. — Vol. 77(6). — p. 769−776.
  118. Ormerod, L.D. Retinal and choroidal manifestations of cat-scratch disease / L.D. Ormerod, K.A. Skolnick, M.M. Menosky, // Ophthalmology. 1998. — Vol. 105. -p. 1024−1031.
  119. Palay, D.A. Decrease in the risk of bilateral acute retinal necrosis by acyclovir therapy / D.A. Palay, P. Sternberg, J. Davis // American Journal of Ophthalmology. -1991.-Vol. 112.-p. 250−255.
  120. Palestine, A.G. Clinical aspects of cytomegalovirus retinitis / A.G. Palestine // Reviews of Infectious Diseases. 1988. — Vol. 10(3). — p. 15−21.
  121. Pavesio, C.E. Acquired retinochoroiditis in hamsters inoculated with ME 49 strain Toxoplasma / C.E. Pavesio, M.L. Chiappino, P. Gormley, P.Y. Setzer, B.A. Nichols // Investigative Ophthalmology and Visual Science. 1995. — Vol. 36(11). -p. 2166−75.
  122. Pederson, J.E. Pathology of pars planitis / J.E. Pederson, K.R. Kenyon, W.R. Green // American Journal of Ophthalmology. 1978. — Vol. 86. — p. 762−774.
  123. Pepose, J.S. Acquired immune deficiency syndrome. Pathogenic mechanisms of ocular disease / J.S. Pepose, G.N. Holland, M.S. Nestor, A.J. Cochran, R.J. Foos // Ophthalmology. 1985. — Vol. 92(4). — p. 47284.
  124. Pillai, G.S. The Retinal Spectrum of Ocular Tuberculosis / G.S. Pillai, A. Khake, N. Radhakrishnan // Kerala Journal of Ophthalmology. 2008. — Vol. 20(3). -p. 303−305.
  125. Prieto-del-Cura, M. Complications of uveitis: prevalence and risk factors in a series of 398 cases / M. Prieto-del-Cura, J. Gonzalez-Guijarro // Archivos de la Sociedad Espanola de Oftalmologia. 2009. — Vol. 84(10). — p. 523−528.
  126. Rao, N.A. Pathology of Vogt-Koyanagi-Harada disease / N.A. Rao // International ophthalmology. 2007. — Vol. 27(3). — p. 81−85.
  127. Rao, N.A. Experimental Ocular Tuberculosis in Guinea Pigs / N.A. Rao, T.A. Albini, M. Kumaradas, M.L. Pinn, M.M. Fraig, P.C. Karakousis // Archives of Ophthalmology. 2009. — Vol. 127(9). — p. 1162−1166.
  128. Rao, N.A. Tuberculous uveitis: distribution of Mycobacterium tuberculosis in the retinal pigment epithelium / N.A. Rao, S. Saraswathy, R.E. Smith // Archives of Ophthalmology. 2006. — Vol. 124. — p. 1777−1779.
  129. Roan, N.R. Immune-mediated control of Chlamydia infection / N.R. Roan, M.N. Starnbach // Cellular Microbiology 2008. — Vol. 10(1). — p. 9−19.
  130. Roberts, F. Histopathological features of ocular toxoplasmosis in the fetus and infant / F. Roberts, M.B. Mets, D J. Ferguson, R. O’Grady, C. O’Grady, P. Thulliez, A.P. Brezin, R. McLeod // Archives of Ophthalmology. 2001. — Vol. 119(1). -p. 51−58.
  131. Rosen, P.H. Intraocular tuberculosis / P.H. Rosen, D.J. Spalton, E.M. Graham // Eye. 1990. — Vol. 4. — p. 486−492.
  132. Rothova, A. Ocular involvement in toxoplasmosis / A. Rothova // British Journal of Ophthalmology. 1993. — Vol. 77(6). — p. 371−377.
  133. Rothova, A. Therapy for ocular toxoplasmosis / A. Rothova, H.J. Buitenhuis, C. Meenken, C.J. Brinkman, G.S. Baarsma, T.N. Boen-Tan // American Journal of Ophthalmology. -1993. Vol. 115(4). p. 517−523.
  134. Rummelt, V. Detection of varicella zoster virus DNA and viral antigen in the late stage of bilateral acute retinal necrosis syndrome / V. Rummelt, H. Wenkel, C. Rummelt // Archives of Ophthalmology. 1992. — Vol. 110. — p. 1132−1136.
  135. Rutnin, U. Fundus appearance in normal eyes. III. Peripheral degenerations / U. Rutnin, C.L. Schepens // American Journal of Ophthalmology. 1967. — Vol. 64(6). -p. 1040−1062.
  136. Sahu, G.N. Manifestations in ocular tuberculosis / G.N. Sahu, N. Mishra, R.C. Bhutia, A.B. Mohanty // Indian Journal of Tuberculosis. 1998. — Vol. 45. -p. 153−154.
  137. Saini, J.S. Primary tuberculosis of the retina / J.S. Saini, A.K. Mukherjee, N. Nadkarni // British Journal of Ophthalmology. 1986. — Vol. 70(7). — p. 533−535.
  138. Salman, A. Optical coherence tomography in choroidal tuberculosis / A. Salman, P. Parmar, M. Rajamohan, C.G. Vanila, P.A. Thomas, C.A. Jesudasan // American Journal of Ophthalmology.-2000.-Vol. 142(1).-p. 170−172.
  139. Schuppan, D. MMPs in the gut: inflammation hits the matrix / D. Schuppan, E. Hahn // Gut. 2000. — Vol. 47(1). — p. 12−14.
  140. Schwartz, J.N. Experimental cytomegalovirus ophthalmitis / J.N. Schwartz, C.A. Daniels, J.C. Shivers, G.K. Klintworth // American Journal of Pathology. 1974. -Vol. 77(3).-p. 477−492.
  141. Seal, D. Ocular infection. / D. Seal, U. Pleyer. New York: Infectious Healthcare, 2007.-380 p.
  142. Segawa, K. Electron microscopy of experimental uveitis / K. Segawa, G.K. Smelser // Investigative Ophthalmology and Visual Science. 1969. — Vol. 8(5). -p. 497−520.
  143. Sethi, C.S. Matrix metalloproteinase biology applied to vitreoretinal disorders / C.S. Sethi, T.A. Bailey, P.J. Luthert, N.H. Chong // British Journal of Ophthalmology. 2000. — Vol. 84(6). — p. 654−666.
  144. Shah, S.M. Tuberculosis presenting as retinal vasculitis / S.M. Shah, R.S. Howard, N.J.C. Sarkjes, E.M. Graham // Journal of the Royal Society of Medicine. 1988.-Vol. 81.-p. 232−233.
  145. Sharma, A. Ocular tuberculosis: an update / A. Sharma, B. Thapa, P. Lavaju // Nepal Journal of Ophthalmology. 2011. — Vol. 3(5). — p. 52−67.
  146. Shen, D. Chlamydia pneumoniae infection, complement factor H variants and age-related macular degeneration / D. Shen, J. Tuo, M. Patel, A.A. Herzlich, X. Ding, E.Y. Chew, C.C. Chan // British Journal of Ophthalmology. 2009. — Vol. 93(3).-p. 405−408.
  147. Smith, J.R. Atypical presentations of ocular toxoplasmosis / J.R. Smith, E.T. Cunningham // Current Opinion in Ophthalmology. 2002. — Vol. 13(6). — p. 387 392.
  148. Spaide, R.F. Serous detachment of the retina / R.F. Spaide, M. Goldbaum, D.W. Wong, K.C. Tang, T. Iida // Retina. 2003. — Vol. 23(6). — p. 820−846.
  149. Spaide, R.F. Successful treatment of progressive outer retinal necrosis syndrome/ R.F. Spaide, D.F. Martin, S.A. Teich, A. Katz, I. Toth // Retina. 1996. — Vol. 16(6).-p. 479−487.
  150. Spencer, W.H. Ophthalmic Pathology: An Atlas and Textbook. Vol 1 / W.H. Spencer. Philadelphia: WB Saunders, 1996.-3044 p.
  151. Stanford, M.R. Treating ocular toxoplasmosis: current evidence / M.R. Stanford, R.E. Gilbert // Memorias do Institute Oswaldo Cruz. 2009. — Vol. 104(2). -p. 312−315.
  152. Sudharshan, S. Current approach in the diagnosis and management of posterior uveitis / S. Sudharshan, S.K. Ganesh, J. Biswas // Indian Journal of Ophthalmology. -2010.-Vol. 58(1).-p. 29−43.
  153. Suzuki, J. Analysis of Retinal Findings of Acute Retinal Necrosis Using Optical Coherence Tomography / J. Suzuki, H. Goto, H. Minoda, T. Iwasaki, J. Sakai, M. Usui // Ocular Immunology and Inflammation. 2006. — Vol. 14(3). — p. 165−170.
  154. Thrimawithana, T.R. Drug delivery to the posterior segment of the eye / T.R. Thrimawithana, S. Young, C.R. Bunt, C. Green, R.G. Alany // Drug Discovery Today. -2011. Vol. 16(5−6). — p. 270−277.
  155. Tibbetts, M.D. Treatment of acute retinal necrosis / M.D. Tibbetts, C.P. Shah, L.H. Young, J.S. Duker, J.I. Maguire, M.G. Morley // Ophthalmology. 2010. -Vol. 117(4).-p. 818−824.
  156. Wagenlehner F.M. Chlamydial infections and prostatitis in men / Wagenlehner F.M., Naber K.G., Weidner W. // British Journal of Urology International. 2006. -Vol. 97(4).-p. 687−690.
  157. Wang, J.C. Tuberculous choroidal granulomas in a patient with systemic lupus erythematosus. A case report / J.C. Wang, G.C. Chuah, E.Y. Yap // International Ophthalmology. 2001. — Vol. 24. — p. 107−109.
  158. Wetzig, R.P. Clinical and immunpathological studies of pars planitis in a family / R.P. Wetzig, C.C. Chan, R.B. Nussenblatt // British Journal of Ophthalmology. -1998.-Vol. 72.-p. 5−10.
  159. Whirrum, J. A. Ocular Disease Induced in Mice by Anterior Chamber Inoculation of Herpes Simplex Virus / J.A. Whirrum, J.P. McCulley, J.Y. Niederkorn, W.J. Srreilein // Investigative Ophthalmology and Visual Science. 1984. — Vol. 25(9). -p. 1065−1073.
  160. Whittle, R.M. Human antiretinal antibodies in toxoplasma retinochoroiditis / R.M. Whittle, G.R. Wallace, R.A. Whiston, D.C. Dumonde, M.R. Stanford // British Journal of Ophthalmology. 1998. — Vol. 82(9). — p. 1017−1021.
  161. World Health Organization Task Force on the Prevention and Management of Infertility. Tubal infertility: serologic relationship to past chlamydial andgonococcal infection. // Sexually Transmitted Diseases. 1995. — Vol. 22(2). -p. 71−77.
  162. Wu, J.S. Clinicopathologic findings in a patient with serpiginous choroiditis and treated choroidal neovascularization /J.S. Wu, H. Lewis, S.L. Fine, D.A. Grover, W.R. Green //Retina. 1989. — Vol. 9(4). -p. 292−301.
  163. Yanoff, M. Pathology of human cystoid macular edema / M. Yanoff, B.S. Fine, A.J. Brucker, R.C.Jr. Eagle // Survey of Ophthalmology. 1984. — Vol.28, — p. 505 511.
  164. Yoser, S.L. Systemic viral infections and their retinal and choroidal manifestations / S.L. Yoser, D.J. Forster, N.A. Rao // Survey of Ophthalmology. -1993.-Vol. 37(5).-p. 313−352.
  165. Zaltas, M.M. Immunohistopathologic findings in herpes simplex virus chorioretinitis in the von Szily model / M.M. Zaltas, E.M. Opremcak, R. Hemady, C.S. Foster // Investigative Ophthalmology and Visual Science. 1992. — Vol. 33(1).-p. 68−77.
  166. Zhang, M. Lack of TNF-alpha promotes caspase-3-independent apoptosis during murine cytomegalovirus retinitis / M. Zhang, J. Covar, B. Marshall, Z. Dong, S.S. Atherton // Investigative Ophthalmology and Visual Science. 2011 — Vol. 52(3). -p. 1800−1808.
  167. Zhang, M. Infection of retinal neurons during murine cytomegalovirus retinitis / H. Xin, P. Roon, S.S. Atherton // Investigative Ophthalmology and Visual Science. 2005 — Vol. 46(6). — p. 2047−2055.
  168. Zinkernagel, M.S. In vivo imaging of ocular MCMV infection / M.S. Zinkernagel, C. Petitjean, P. Fleming, H.R. Chinnery, I.J. Constable, P.G. McMenamin, M.A. Degli-Esposti // Investigative Ophthalmology and Visual Science. -2010-Vol. 51(1). p. 369−374.
  169. Zur, D. Combination therapy for diabetic macular edema / D. Zur, A. Loewenstein // Journal of Ophthalmology. 2012. — Vol. 51(1). — p. 604−612.1. ЕДИНИЦ И ТЕРМИНОВ
  170. ВЗ вирус герпеса 3 типа (Varicella zoster)
  171. ВМД возрастная макулярная дегенерация-
  172. ВПГ вирус простого герпеса-
  173. ДЗН диск зрительного нерва-
  174. ДД диаметр диска зрительного нерва-
  175. ЗГМ задняя гиалоидная мембрана-1. ИЛ интерлейкин-1. ИФН интерферон-
  176. ММП матриксная металлопротеиназа-
  177. НПМ наружная пограничная мембрана-
  178. ОКТ оптическая когерентная томография-
  179. ОНС острый некроз сетчатки-
  180. ПИФ прямая иммунофлюоресценция-
  181. ПННС прогрессирующий наружный некроз сетчатки-
  182. ПХРД периферическая хориоретинальная дистрофия-
  183. ПЦР полимеразная цепная реакция-
  184. ПЭС пигментный эпителий сетчатки-1. ССГ синдром сухого глаза-
  185. УЗИ ультразвуковое исследование-
  186. ФНО фактор некроза опухоли-
  187. ЦМВ цитомегаловирус, вирус герпеса 5 типа (Human herpesvirus 5) — CD — кластер дифференцировки-
  188. HLA human leukocyte antigen, человеческий лейкоцитарный антиген- ICAM — молекула межклеточной адгезии- VEGF — фактор роста эндотелия сосудов-
Заполнить форму текущей работой

Пора сдавать?