Помощь в учёбе, очень быстро...
Работаем вместе до победы

Структурно-функциональные особенности эндотелия человека в норме и при атеросклерозе

Диссертация: Структурно-функциональные особенности эндотелия человека в норме и при атеросклерозе
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

Многочисленные попытки объяснения патогенеза атеросклероза у человека вылились в создание целого ряда теорий возникновения этого заболевания. Еще в начале 1850-х годов Rokitansky предположил, что отложение фибрина в участках поврежденной сосудистой стенки может вызывать образование атеросклеротичес-кого поражения. Немногим позднее, Virchow указал, что накопление липидов в сосудистой интиме… Читать ещё >

Содержание

  • Список использованных сокращений
  • ГЛАВА I. ОБЗОР ЛИТЕРАТУРЫ
    • 1. Изменения в сосудистой стенке на ранних стадиях экспериментального атеросклероза
    • 2. Морфологическая гетерогенность эндотелия человека
    • 3. Молекулярные механизмы распознавания, адгезии и миграции клеток крови
      • 3. 1. Молекулы клеточной адгезии ЭК
        • 3. 1. 1. Семейство селектинов
  • Е-селектин
  • Р-селектин
  • L-селектин
    • 3. 1. 2. Семейство иммуноглобулинов
    • I. CAM-1 / ICAM
    • V. CAM
  • РЕСАМ
    • 3. 2. Другие участники взаимодействия ЭК-лейкоцит
  • Фактор активации тромбоцитов, PAF
  • Интерлейкин
  • Трансформирующий ростовой фактор-бета, TGF-P
    • 3. 3. Дальнейшая судьба лейкоцитов в интиме
    • 4. Цитокиновая сеть. Источники и мишени цитокинов в сосудистой стенке
    • 4. 1. Фактор некроза опухолей-альфа, TNF-a
    • 4. 2. Интерлейкин
    • 4. 3. Антагонист рецептора ИЛ-1. 4.4. Интерлейкин
    • 4. 5. Интерлейкин
    • 4. 6. Интерлейкин
    • 4. 7. Интерлейкин
    • 4. 8. Интерлейкин
    • 4. 9. Колоние-стимулирующие факторы
    • 4. 10. Трансформирующий ростовой фактор-бета, TGF-p
    • 4. 11. Интерфероны
    • 5. Роль вирусов в инициации атеросклероза
    • 5. 1. Особенности развития вирусной инфекции сосудистой стенки
    • 5. 2. Адсорбция вирусных частиц и инфицирование
    • 5. 3. Особенности метаболизма инфицированных клеток
    • 6. Структурно-функциональные особенности различных типов культивируемых клеток в условиях невесомости и моделируемой гипогравитации

Структурно-функциональные особенности эндотелия человека в норме и при атеросклерозе (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Согласно современным представлениям, атеросклероз является многопричинным заболеванием, затрагивающим многие физиологические и патологические механизмы. Среди факторов, на сегодняшний день установленных, -генетическая предрасположенность, условия гемодинамики в отдельных участках сосудистого русла, комбинации различных риск-факторов (гиперхолестеринемия, артериальная гипертензия, сахарный диабет), иммунные и аутоиммунные нарушения, вирусная инфекция и т. д. [Wick et al, 2001; Najemnick et al, 1999; Landmesser etal, 2000; Benitez, 1999; La Rossa, 1998; Gimbrone, 1999; Libbi, Hansson, 1991]. Обычно, бывает трудно ответить на вопрос, что же явилось основной причиной развития заболевания.

Многочисленные попытки объяснения патогенеза атеросклероза у человека вылились в создание целого ряда теорий возникновения этого заболевания. Еще в начале 1850-х годов Rokitansky предположил, что отложение фибрина в участках поврежденной сосудистой стенки может вызывать образование атеросклеротичес-кого поражения. Немногим позднее, Virchow указал, что накопление липидов в сосудистой интиме способствует пролиферации клеток и развитию атеросклероза. В дальнейшем, Аничков разработал холестериновую модель атеросклероза у кроликов и определил атеросклероз, как хроническое заболевание, характеризующееся первичным отложением липидов в стенке артерий, вторичным реактивным разрастанием соединительной ткани, и как следствие — образованием склеротических утолщений-бляшек [Anitchkov, 1913]. В последующие годы был предложен целый ряд концепций, из которых наибольшее распространение получила теория Ross [1976, 1986], предполагающая, что атеросклероз является результатом повторного повреждения эндотелия, сопровождающимся адгезией тромбоцитов, их активацией на обнаженной субэндотелиальной поверхности и миграцией макрофагов в интиму. В результате — образование пенистых клеток макрофагального происхождения, миграция и пролиферация гладкомышечных клеток (ГМК), синтез и депонирование внеклеточного матрикса, фиброзирование ткани. Тем не менее, присутствие в эндотелиальной выстилке обширных участков деэндотелиализации было опровергнуто результатами многих исследований [Schwenke, Carew, 1989; Witztum, 1990; Simionescu, Simionescu, 1993].

В этой связи, под «повреждением» эндотелия в настоящее время принято понимать не механическую денудацию, а сложный комплекс изменений внутриклеточного метаболизма, приводящих к «дисфункции» эндотелиальных клеток [Ross, 1992; Gimbrone et al, 2000; Toborek, Kaiser, 1999; Shimokawa, 1999]. Сюда можно отнести изменение барьерной функции [Lum, Malik, 1994], нарушения регуляции сосудистого тонуса [Vanhoutte, Mombuli, 1996], фибринолитической активности [Mann, 1997], иммунологических и про-воспалительных параметров клеток и т. д. [Libbi, 1991; Hill, 1997; Gown et al, 1986]. Последствиями дисфункции эндотелиальных клеток (ЭК) могут являться нарушенная реактивность сосудов и вазоспазм, адгезия, трансмиграция и накопление в интиме клеток гематогенного происхождения, нарушение пролиферативной/секреторной функции сосудистых ГМК, а также нарушение процессов регенерации самих ЭК.

Актуальность исследования. Морфологическая гетерогенность ЭК магистральных сосудов по размеру клеток, содержанию белка и плоидности является одной из наиболее ярких отличительных черт эндотелия человека от эндотелия экспериментальных животных. Еще в 1950;е годы было отмечено, что единичные многоядерные ЭК появляются уже в детском возрасте, и в дальнейшем их содержание неуклонно возрастает, достигая десятков процентов в сосудах взрослых людей [Каменская, 1952]. Наибольшее развитие изучение морфологической гетерогенности эндотелия получило в конце 1970;х — начале 80-х годов, когда об этом явлении впервые заговорили, как о процессе, возможно связанном с атерогенезом. Увеличение относительного содержания гигантских многоядерных или, так называемых, «вариантных» («variant») ЭК в пораженных атеросклерозом сосудах и возрастные корреляции подвели к предположению о том, что эти клетки, возможно, и являются искомым морфологическим базисом атеросклероза [Вихерт, Розинова, 1981, 1983; Repin et al, 1984; Antonov et al, 1986; Tokunaga et al, 1989; Watanabe, 1990; Wu et al, 1999]. Тем не менее, несмотря на длительно повышенный интерес к этой популяции, до настоящего времени никому из исследователей так и не удалось выявить каких-либо существенных метаболических изменений, свойственных данной клеточной разновидности, впрочем, как и полностью отрицать их вовлечение в атерогенез [Wu et al, 1999; Satoh etal, 1998; Tokunaga et al, 1998].

Еще одной, крайне интересной формой морфологической гетерогенности эндотелия магистральных артериальных сосудов человека, является способность ЭК формировать группы — т.н. кластеры, состоящие из клеток приблизительно одного размера и формы. Завидное постоянство, с которым кластеризованный эндотелий выявляется в зонах, предрасположенных к развитию атеросклероза, и участках, окружающих уже существующие атеросклеротические бляшки, свидетельствует, что эта форма гетерогенности может иметь непосредственное отношение к процессам атерогенеза [Романов, 1989; Романов, Антонов, 1991; Romanov etal, 1995,1999].

В последние годы все больше внимания уделяется возможной взаимосвязи патогенеза атеросклероза и воспаления в сосудистой стенке [Plutzky, 2001; Koenig, 2001; Ross, 1999; Robbie, Libby, 2001]. Это связано с тем, что в механизмах развития различных форм сосудистой патологии, таких как васкулиты, отторжение трансплантата, ишемия-реперфузия и т. п., есть много общего. Адгезия циркулирующих в крови клеточных элементов на эндотелий и их трансмиграция в субэндотелиальные слои интимы является неотъемлемым компонентом многих острых и хронических воспалительных реакций и одним из наиболее ранних событий атерогенеза [Ross, 1999; Faggiotto etal, 1984; Munro, Cotran, 1988].

Основная физиологическая роль миграции клеточных компонентов крови в сосудистую стенку и подлежащие ткани заключается в участии лейкоцитов в различных механизмах защиты организма. Нейтрофилы одними из первых появляются в очаге поражения для нейтрализации патогенного стимула. В дальнейшем, к ним присоединяются лимфоциты, определяющие локальный иммунный ответ и модуляцию иммунитета в целом. Совместные действия различных клеточных популяций заканчиваются, обычно, устранением патогена и репарацией повреждения. При этом, наряду с положительными эффектами присутствия клеток крови, их биологическая активность может иметь и отрицательные стороны, вследствие нарушения баланса метаболических процессов в сосудистой стенке. Одной из причин «негативного» поведения клеток крови в интиме является их высокая синтетическая и секреторная активность [Cassatella, 1995]. Уже в процессе взаимодействия с эндотелием клетки крови частично активируются [Zimmerman et al, 1992; Lorant et al, 1991]- их дальнейшая судьба определяется микроокружением, т. е. как минимум, двумя факторами: межклеточным матриксом и комплексом биологически активных молекул, продуцируемых а) ими же самими, б) эндотелием, в) ГМК.

Вся последовательность дальнейших событий в интиме возможна лишь при одном условии: существовании участков функционально измененного, активированного эндотелия, экспрессирующего молекулы, участвующие в привлечении гематогенных клеток. Подобные условия, по-видимому, имеют место на начальных стадиях атерогенеза. Исследования экспрессии различных классов молекул клеточной адгезии (МКА) эндотелием показали присутствие в эндотелиальной выстилке участков, экспрессирующих эти белки, в случаях, как экспериментального атеросклероза у животных, так и в сосудах человека [Cybulsky,.

Gimbrone, 1991; Poston et al, 1992; O’Brien et al, 1993; Wood et al, 1993]. Одновременно, в субэндотелии были выявлены скопления клеток гематогенного происхождения (макрофагов, лимфоцитов и т. д.). В этой связи однозначно ответить на вопрос о первичности подобных изменений в эндотелии было затруднительно. С одной стороны, клетки гематогенного происхождения, составляющие интимальные инфильтраты, способны индуцировать экспрессию МКА вышерасположенным эндотелием, благодаря продукции про-воспалительных цитокинов и ростовых факторов. С другой, они вряд ли оказались бы в субэндотелиальном пространстве, не пройдя сквозь тот же эндотелий. Так что повышенная экспрессия МКА в локальных участках сосудистого русла является, по-видимому, первичной.

Среди многочисленных факторов, способных прямо или опосредовано влиять на экспрессию эндотелием различных классов МКА и принимать участие в инициации воспалительных изменений в сосудистой стенке, особый интерес представляют агенты вирусной природы, особенно, представители семейства герпесвирусов. В первую очередь, это относится к двум наиболее распространенным в человеческой популяции вирусам: вирусу простого герпеса 1 типа (ВПГ-1) и цитомегаловирусу (ЦМВ) [Hajjar, 1991; Persoons et al, 1994; Melnick et al, 1993; Childs et al, 1993]. И тот и другой способны инфицировать клетки сосудистой системы (ЭК и ГМК), вызывая в них комплекс структурных и функциональных изменений. Другой особенностью обоих вирусов является способность формирования латентной инфекции с периодами реактивации, с чем связывают развитие различных осложнений, включая сосудистые, у пациентов, находящихся на иммуносупрессивной терапии. Один из механизмов, лежащих в основе развития воспалительной реакции с участием ВПГ-1-инфицированных ЭК, заключается в способности этого вируса индуцировать экспрессию Р-селектина [Hajjar, 1991], участвующего в инициации взаимодействия ЭК-лейкоцит.

Бесспорным лидером среди агентов вирусной природы, с которыми связывают и развитие атеросклероза, и возникновение трансплантационных осложнений, в основе которых лежат те же клеточные механизмы, является ЦМВ [Persoons et al, 1994; Melnick et al, 1993; Childs et al, 1993]. Как и в случае ВПГ-1, первичная ЦМВ-инфекция клеток сосудистой стенки или реактивация латентного вируса являются триггером в развитии цепи последующих патологических событий. Наибольшее число ЭК и интимальных ГМК, несущих вирусный геном или имеющих признаки реактивации вируса, выявляются в участках наиболее ранних проявлений атеросклеротического процесса [Pampou et al, 2000].

Взаимодействие эндотелия с клетками крови представляет собой лишь часть событий, имеющих место в ходе атерогенеза. Не менее интересным представляется взаимодействие ЭК с основным клеточным компонентом неизмененной интимы — ГМК. Известно, что ЭК способны продуцировать как ингибиторы, так и стимуляторы пролиферативной и синтетической активности ГМК. Последние, в свою очередь, также являются мощным, если не основным, источником цитокинов в сосудистой стенке и способны регулировать метаболизм, как самих себя (аутокринно), так и, по-видимому, выше лежащего эндотелия. Таким образом, в сосудистой стенке существует сложная сеть взаимного ингибирования и активации, участниками которых являются все три разновидности клеток, ее составляющих: эндотелиальные клетки, гладкомышечные клетки и клетки крови.

Еще одним фактором, постоянно действующим на все живые одноклеточные и многоклеточные организмы, является фактор гравитации. Об этом факторе обычно забывают, поскольку он постоянно действует в наземных условиях. Между тем, исследования, проводимые в условиях измененной гравитации в модельных системах и условиях реального космического полета, свидетельствуют, что действие этого фактора (точнее, его практически полное отсутствие) сказывается на функционировании большинства исследованных клеточных типов [Таирбеков, 1997]. Данные о регуляторной функции фактора гравитации и возможным последствиям его изменения для организма человека на клеточной уровне в литературе отсутствуют. Неизвестно даже, существует ли гравитационная чувствительность клеточных элементов сосудистой стенки и не с этим ли связан сложный комплекс негативного влияния невесомости на организм человека.

Цель и задачи исследования

Основная цель данного исследования заключалась в поиске взаимосвязи между особенностями морфологической гетерогенности эндотелия и топографией преимущественного возникновения атеросклеротических поражений в сосудах человека и изучении роли межклеточных взаимодействий с участием основных клеточных компонентов сосудистой стенки в развитии сосудистой патологии. К задачам исследования были отнесены:

1. изучение особенностей организации эндотелия аорты человека в зонах с различной предрасположенностью к атеросклерозу (НПА — низкой и ВПАвысокой);

2. адаптация методов выделения и культивирования различных типов клеток сосудистой стенки человека;

3. анализ структурно-функциональных параметров ЭК в культурах, полученных раздельно из зон НПА и ВПА;

4. отработка экспериментальных моделей и исследование особенностей межклеточных взаимодействий с участием различных популяций ЭК в условиях со-культивирования с резидентными и мигрирующими в интиму типами клеток (ГМК и клетками крови);

5. изучение возможных механизмов возникновения некоторых форм гетерогенности эндотелия;

6. поиск функциональных изменений различных популяций ЭК, способных объяснить локальный характер развития атеросклеротических поражений в сосудах человека;

7. исследование роли вирусной инфекции в возникновении популяций функционально измененного эндотелия и особенностей взаимодействия инфицированных ЭК с другими клеточными типами;

8. разработка экспериментальной модели гипогравитации с применением культивируемых ЭК человека и изучение особенностей функционирования эндотелия в измененных условиях.

Иными словами, основным направлением работы был поиск ответа на вопрос: почему атеросклеротические поражения развиваются локально и лишь в определенных участках сосудистой стенки, и какие факторы внешней среды могли бы оказаться решающими в развитии различных форм сосудистой патологии, включая атеросклероз?

Научная новизна. Практически все основные результаты работы получены впервые. Для исследования особенностей организации эндотелиального монослоя в сосудах человека была разработана оригинальная методика импрегнации, основанная на фотографическом усилении контраста межклеточных границ. Использование данного метода позволило отказаться от сканирующей электронной микроскопии, избежать ряда артефактов и использовать для анализа световую микроскопию. Кроме этого, стало возможным анализировать поверхность целого сосуда, практически, невзирая на его толщину и неровность рельефа. Использование данной методики на большой выборке аутопсийных аорт (возраст от 1 месяца до 70 лет) позволило проследить динамику нарастания гетерогенности эндотелия в различных участках сосуда, в том числе, в зонах с различной предрасположенностью к атеросклерозу (НПА и ВПА).

Впервые установлено, что особенностью эндотелия в зонах ВПА являются опережающие темпы нарастания морфологической гетерогенности, содержания гигантских ЭК (в среднем вдвое по сравнению с зонами НПА тех же сосудов) и изменение организации монослоя, проявляющееся в кластеризации клеток близкого размера и формы. Впервые удалось связать морфологические особенности эндотелия с топографией преимущественного развития атеросклеротических поражений.

Благодаря оптимизации методик выделения и культивирования ЭК, был разработан способ получения высоко репрезентативных культур эндотелия из зон с различной предрасположенностью к атеросклерозу и участков с различной степенью атеросклеротического поражения.

При культивировании клеток в присутствии 3Н-тимидина впервые было установлено, что многоядерные ЭК неспособны к синтезу ДНК и пролиферации, что характеризует эту популяцию как покоящуюся и, возможно, терминальную стадию развития эндотелия. Анализ пролиферативной активности ЭК в культурах из зон НПА и ВПА позволил впервые установить, что возникновение атеросклеротических поражений коррелирует со значительным снижением пролиферативной активности клеток. Полученные данные явились первым доказательством существования функциональных, связанных с атеросклерозом различий клеток в зонах с различной предрасположенностью к заболеванию. Дальнейший анализ культур позволил выявить более высокую чувствительность ЭК в культурах из зон ВПА к действию повреждающих факторов и более низкую, по сравнению с клетками из зон НПА, активность аденилатциклазной системы. Впервые показано, что длительная гипертермия вызывает повреждение культивируемых ЭК, способствует возникновению морфологической гетерогенности эндотелия и может рассматриваться, как дополнительный фактор риска развития сосудистой патологии.

При моделировании межклеточных взаимодействий с помощью со-культивирования ЭК и ГМК было установлено, что способностью тормозить пролиферацию ГМК обладают лишь клетки, выделенные из зон НПА нормальных аорт. Клетки из зон ВПА тех же аорт практически не влияли, а клетки из атеросклеротических сосудов иногда даже стимулировали пролиферативную активность ГМК. Полученные данные впервые показали, что межклеточные взаимодействия ЭК и ГМК нарушаются в зонах ВПА уже на ранних этапах атерогенеза и могут быть вовлечены в формирование атеросклеротической бляшки.

Впервые показано, что в составе эндотелиальной выстилки аорты человека присутствуют клетки с высоким запасом пролиферативного потенциала («камбиальные» ЭК, колониеобразующие единицы эндотелия, тканевые клетки-предшественники), способные формировать дискретные клеточные колонии (клоны) при низкой плотности посадки в культуру. Число таких клеток составляет всего от долей до единиц процентов и всегда ниже в культурах из зон ВПА. Наименьшее число колониеобразующих ЭК было выявлено в культурах из атеросклеротических зон ВПА, где их содержание составляло всего 1−3 на 1000 посаженных клеток.

Впервые была сформулирована гипотеза о клональной природе кластеров ЭК in situ и их возможной функциональной неоднородности. В подтверждение, была разработана культуральная модель, с помощью которой впервые удалось воспроизвести в культуре гетерогенный кластеризованный монослой ЭК, состоящий из морфологически и функционально различающихся клеточных популяций.

В ходе экспериментов, проведенных с одним из наиболее распространенных в человеческой популяции ДНК-содержащих вирусов — вирусом простого герпеса 1 типа (ВПГ-1), удалось прояснить некоторые механизмы нарушения межклеточных взаимодействий с участием ВПГ-1-инфицированных клеток. Полученные данные подтвердили предположение, что вирусная инфекция эндотелия может являться инициирующим фактором в развитии воспалительного процесса и появлении субэндотелиальных инфильтратов, состоящих из клеток гематогенного происхождения, т. е. способствовать возникновению и прогрессии атеросклероза.

Отдельный раздел исследования был посвящен изучению функционирования эндотелия человека в условиях гипогравитации в модельной наземной системе. Полученные данные впервые показали высокую чувствительность культивируемых ЭК человека к изменению гравитации, связанную с изменением структуры актинового цитоскелета, пролиферативной активности, клеточной подвижности, экспрессии различных классов МКА и взаимодействия с клеточными элементами периферической крови.

Научно-практическая значимость работы. Полученные экспериментальные данные позволяют расширить сложившиеся представления о клеточных механизмах развития сосудистой патологии и атеросклероза у человека. Разработанные методические приемы позволяют использовать культуры ЭК человека для проведения исследований в различных областях клеточной биологии эндотелия, изучения структурных изменений эндотелия экспериментальных животных при различных воздействиях и формах патологии, исследования различных аспектов межклеточных взаимодействий с использованием культивируемых клеток человека и животных.

Разработанная методика импрегнации межклеточных границ с последующим анализом препаратов с помощью световой микроскопии может быть успешно применена при исследовании эндотелия, выстилающего, как крупные артериальные и венозные сосуды, так и мелкие их ветви, вплоть до капилляров.

Разработанная модель оценки структурно-функциональных параметров ЭК при инфицировании ВПГ-1 может быть использована для изучения широкого спектра вирусных инфекций человека, в том числе, других представителей семейства герпесвирусов, вирусов гепатита и др., оценки эффективности новых и уже существующих противовирусных препаратов, тестирования различных биологически активных веществ и т. д.

Разработанная модель изучения эффектов гипогравитации с использованием культивируемых ЭК может быть рекомендована для изучения эффектов гипои микрогравитации на любых типах клеток человека и экспериментальных животных, культивируемых в прикрепленном состоянии. Результаты исследований, полученные на культивируемых ЭК, могут быть приняты во внимание при разработке методов профилактики осложнений со стороны сердечно-сосудистой и других систем у космонавтов, длительное время пребывающих в состоянии невесомости на орбитальных станциях.

Результаты исследования были представлены в виде устных и стендовых сообщений на международных конгрессах и симпозиумах: 62nd European Atherosclerosis Society Congress (Иерусалим, Израиль, 1993 г.) — 3rd Saratoga International Conference on Atherosclerosis (Токио, Япония, 1993 г.) — 8th International Symposium on the Biology of Vascular Cells (Гейдельберг, Германия, 1994 г.) — European Section Meeting of the International Society for Heart Research (Копенгаген, Дания, 1994 г.) — 1st US-Russia Joint Symposium on Vascular Biology and Cellular Differentiation (Даллас, США, 1994 г.) — 6th International Congress on Cell Biology & 36th American Society of Cell Biology Annual Meeting (Сан Франциско, США, 1996 г.) — Inaugural Meeting of the European Society for Clinical Virology, Progress in Clinical Virology III (Болония, Италия, 1997 г.) — 4th Annual Scandinavian Atherosclerosis Conference (Хамлебек, Дания, 1997 г.) — 11th International Symposium on Atherosclerosis (Париж, Франция, 1997 г.) — 1st Congress of the Asian-Pacific Society of Atherosclerosis and Vascular Disease (Таипеи, Тайвань, 1998 г.) — 13th International Symposium on Drugs Affecting Lipid Metabolism (Флоренция, Италия, 1998 г.) — Vascular Biology '98 (Сан Франциско, США, 1998 г.) — XIII International Symposium on Drugs Affecting Lipid Metabolism (Флоренция, Италия, 1998 г.) — Annual Meeting of the International Society for Interferon & Cytokines (Париж, Франция, 1999 г.) — 20th Annual Gravitational Physiology Meeting (Орландо, США, 1999 г.) — 21st and 22nd Annual Gravitational Physiology Meeting (Нагойя, Япония, 2000; Будапешт, Венгрия, 2001) — XII Международной конференции по космической биологии и авиакосмической медицине (Москва, 2002 г.).

выводы.

1. Развитию видимых атеросклеротических поражений в аорте человека предшествует возникновение морфологической гетерогенности эндотелия. В зонах с высокой предрасположенностью к атеросклерозу гетерогенность эндотелия проявляется в виде кластеризации клеток близкого размера и формы.

2. Развитие видимых атеросклеротических поражений в аорте человека сопровождается снижением пролиферативной активности и способности ЭК к длительному субкультивированию в культурах, полученных из зон с высокой предрасположенностью атеросклерозу.

3. В эндотелиальной выстилке аорты человека присутствует популяция «камбиальных» ЭК, обладающих высоким пролиферативным потенциалом и способностью формировать колонии в культуре клеток. Относительное содержание камбиальных клеток достоверно снижается с возрастом и при возникновении видимых атеросклеротических поражений, преимущественно, в зонах с высокой предрасположенностью к атеросклерозу.

4. Разработана культуральная модель, основанная на технике клонирования клеток и позволяющая воспроизвести in vitro кластеризованный монослой, образованный потомками отдельных камбиальных клеток. Полученные данные позволяют предполагать клональное происхождение кластеров ЭК, выявляемых в аорте человека in situ.

5. Популяции ЭК, полученные путем клонирования, различаются по функциональной активности: скорости пролиферации, содержанию специфических маркеров, спонтанной и индуцированной экспрессии различных классов молекул клеточной адгезии, синтезу и секреции цитокинов и компонентов внеклеточного матрикса, активности в отношении интимальных ГМК в условиях со-культивирования и способности поддерживать вирусную инфекцию.

6. В условиях со-культивирования и в отсутствие других клеточных типов интимальные ГМК способны регулировать функциональное состояние эндотелия: экспрессию различных классов молекул клеточной адгезии и адгезивные свойства клеток в отношении лейкоцитов периферической крови Биологически активные факторы, продуцируемые ГМК в культуре, обладают противовирусной активностью в отношении ВПГ-1 и способствуют становлению латентной (неактивной) инфекции эндотелия.

7. Вирус простого герпеса 1 типа способен инфицировать культивируемые ЭК человека и индуцировать комплекс структурно-функциональных изменений, имеющих про-воспалительную направленность: увеличивать экспрессию молекул клеточной адгезии и повышать адгезивные свойства ЭК в отношении клеток периферической крови. Активация межклеточных взаимодействий в системе ЭК-лейкоцит сопровождается синтезом и секрецией лейкоцитами цитокинов и интерферона, обладающих противовирусной активностью, и способствует локализации вирусной инфекции. Одновременная секреция про-воспалительных цитокинов способствуют активации ЭК и развитию воспалительной реакции в сосудистой стенке.

8. Эндотелий человека обладает высокой чувствительностью к фактору гравитации. Воздействие моделируемой гипогравитации (клиностатирование) индуцирует в культивируемых ЭК структурно-функциональные изменения, связанные с реорганизацией актинового цитоскелета, изменением пролиферативной активности, клеточной подвижности и экспрессии различных классов молекул клеточной адгезии. В условиях моделируемой гипогравитации адгезивные параметры эндотелия изменяются в сторону преимущественного взаимодействия ЭК с активированными клетками периферической крови.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

Клеточные механизмы инициации и развития атеросклероза у человека затрагивают многие аспекты межклеточных взаимодействий. Неслучайно, сотни тысяч работ были опубликованыдесятки теорий возникновения этого заболевания и их модификаций были предложены в разные годы, по мере развития уровня научных исследований. Однако до настоящего времени единая концепция атеросклероза так и не выработана.

Между тем, основные участники атеросклеротического процесса на уровне сосудистой стенки остаются неизменными. Это эндотелиальные клетки, гладкомышечные клетки и клетки гематогенного происхождения. Именно эти три клеточных типа определяют в конечном итоге и нормальное функционирование сосудистой стенки и особенности развития патологического процесса в ней.

Относительно неизменным сохранился и постулат о том, что начальные стадии атеросклероза, будь то атеросклероз экспериментальный или «спонтанный», связаны с функциональными перестройками эндотелия и нарушением его взаимодействия с клетками периферической крови. Сейчас уже все реже говорят о «повреждении» эндотелия и все чаще о его «дисфункции», хотя сам термин «повреждение» нет-нет да мелькнет на страницах обзоров и экспериментальных работ.

Говоря об участии клеток гематогенного происхождения в развитии атеросклероза и других форм сосудистой патологии, следует иметь в виду, что взаимодействие ЭК-лейкоцит строго подчинено определенным законам и попросту невозможно, если не будут соблюдены некоторые условия. Так, ни одна клетка крови, независимо от ее происхождения, не попадет в субэндотелиальное пространство, не пройдя каскад межклеточных взаимодействий с ЭК. Иными словами, вся последующая цепь событий возможна только при наличии участков функционально измененного, активированного эндотелия. Более того, даже после прохождения сквозь эндотелий, клетка крови не останется в интиме, если на то не будет веских оснований, т. е. соответствующего микроокружения в виде компонентов внеклеточного матрикса и коктейля цитокинов, обуславливающих ее «хоуминг» и/или активацию.

Целью данного исследования была попытка изучения некоторых механизмов генеза сосудистой патологии, включая атеросклероз, с позиции сосудистого эндотелия. К моменту начала работы уже было известно, что эндотелий магистральных артериальных сосудов человека представлен гетерогенной популяцией клеток различного размера, формы, ядерности и плоидности. В конце 70-х — начале 80-х годов о явлении морфологической гетерогенности эндотелия впервые заговорили, как о явлении, возможно связанном с атеросклерозом. Однако последующие исследования не выявили сколь-нибудь существенных функциональных отличий многоядерных ЭК от остальной массы клеток, что значительно поколебало надежды на то, что искомый морфологический базис атеросклероза найден. Впрочем, сегодня никто из исследователей не взял на себя ответственность и за то, чтобы полностью исключить возможное участие подобных клеток в патогенезе заболевания.

Тем не менее, интерес к морфологической гетерогенности эндотелия сохранился. Одной из причин этого можно считать данные, касающиеся частоты встречаемости различных форм этой гетерогенности в различных участках одного и того же сосуда, в частности, в зонах с различной статистической предрасположенностью к атеросклерозу. Речь идет о существовании особой, кластеризованной, формы организации монослоя клеток. Возникновение кластеризации ЭК можно, по всей видимости, отнести к одной из стадий развития гетерогенности эндотелия вообще. Складывается впечатление, что рано или поздно кластеризация клеток может возникнуть практически в любом участке сосуда. Интересно, однако, то, что в определенный период жизни она возникает практически только в зонах, предрасположенных к развитию заболевания, еще до появления морфологических изменений интимыуже существующие атеросклеротические бляшки также окружены полями кластеризованного эндотелия. Тот факт, что возникновение кластеризации совпадает со снижением пролиферативной активности ЭК в культурах, выделенных из зон ВПА, позволяет предполагать, что развитие этого феномена так или иначе связано с возрастными изменениями эндотелия в определенных участках сосудистой стенки. В свою очередь это подразумевает возможность ускоренного старения эндотелия в этих зонах.

Подтверждением данного предположения можно считать следующие факты: и накопление многоядерных ЭК, и снижение пролиферативной активности клеток, и пониженная способность клеток к длительному субкультивированию, и падение относительного содержания т.н. «камбиальных» ЭК являются неотъемлемой характеристикой эндотелия в зонах ВПА.

Выявление в составе эндотелия популяции камбиальных ЭК интересно само по себе. В силу терминологических изменений, произошедших в последние несколько лет, сегодня эту популяцию можно назвать «колониеобразующими • единицами эндотелия» или «тканевыми клетками предшественниками». С одной стороны, их присутствие позволяет рассматривать эндотелий как ткань, регенерация которой осуществляется специальной клеточной популяцией, тогда как основная масса клеток находится в дифференцированном состоянии и выполняет ряд специфических функций. С другой, — их существование позволяет рассматривать кластеры клеток, выявляемые in situ, как возможный продукт их жизнедеятельности, т. е. говорить о клональном происхождении отдельных клеточных популяций. Наконец, использование техники культивирования, основанной на получении дискретных клеточных колоний, впервые позволило in vitro воспроизвести кластеризованный монослой, состоящий из морфологически и функционально различающихся клеточных популяций.

Использованный методический прием позволил установить, что клеточные популяции, входящие в состав отдельных кластеров, могут существенно различаться по целому ряду функциональных параметров. Прежде всего, это относится к спонтанной и индуцированной цитокинами экспрессии различных классов молекул клеточной адгезии. Полученные данные свидетельствуют, что в ответ на один и тот же стимул, степень активации клеток может варьировать. Повышенная экспрессия МКА, опосредующих как начальные стадии адгезии лейкоцитов, так и их плотную адгезию и миграцию сквозь эндотелий частью клеточных популяций позволяет предполагать, что при прочих равных условиях именно такие кластеры могут способствовать локальному возникновению субэндотелиальной инфильтрации интимы клетками гематогенного происхождения.

Аналогичная ситуация складывается, по-видимому, и со вторым условием накопления лейкоцитов в субэндотелиальной интиме: синтезом и депонированием отдельных компонентов, входящих в состав базальной мембраны, и секрецией различных растворимых гуморальные факторов. В этой связи следует отметить, что некоторые из клеточных клонов были способны депонировать в составе внеклеточного матрикса тромбоспондин — белок не только являющийся хемоаттрактантом для зрелых и низкодифференцированных форм гематогенных клеток, но и способствующий пролиферации последних. Различия в синтезе гуморальных факторов становятся очевидными при со-культивировании клональных клеточных популяций с ГМК, а также при анализе секреции различных цитокинов в культуральную среду.

Таким образом, нельзя исключить, что достаточно протяженные участки сосудистой стенки могут быть покрыты клетками-потомками, имеющими (сохранившими) в разной степени выраженности про-воспалительные параметры метаболизма материнской клетки. Данная концепция привлекательна тем, что позволяет объяснить и преимущественную топографию атеросклероза в зонах ВПА, и локальность развития атеросклеротических поражений в виде ограниченных образований.

Среди факторов, способных влиять на функциональное состояние эндотелия, определенное внимание было уделено агентам вирусной природы, в частности, вирусу простого герпеса 1 типа — ВПГ-1 — одному из наиболее распространенных в человеческой популяции вирусов. В ходе работы выяснилось, что сосудистый эндотелий полностью соответствует свойствам ткани-мишени для ВПГ-1. Клетки могут быть инфицированы, успешно поддерживают репродукцию вируса, способны к развитию латенции, в определенных условиях вирус может быть реактивирован. Более того, клеточные популяции, происходящие из различных камбиальных клеток, продемонстрировали неодинаковую (иногда диаметрально противоположную) способность к заражению и репродукции вирусных частиц. Нельзя исключить, что участие феномена кластеризации в развитии атеросклероза может иметь отношение и к локальным вирусным/противовирусным механизмам. В данном случае, адгезия клеток гематогенного происхождения на инфицированные ЭК может играть роль своеобразного триггера, запускающего в интиме целую цепь последующих воспалительных событий. С одной стороны, цитокины, продуцируемые активированными в процессе контакта с инфицированным эндотелием лейкоцитами, способствуют локализации инфекции и переходу ее в неактивное (латентное) состояние. С другой, эти же факторы способствуют дальнейшей активации расположенных ниже по току крови клеток, вовлекая в воспалительный процесс новые популяции эндотелиоцитов.

Последние годы ознаменовались открытием еще одного потенциального участника процессов, имеющих место при атерогенезе. Циркулирующие в крови клетки-предшественники гемопоэтического и стромального ряда дифференцировки вполне подходят на роль клеточного элемента, способного формировать локальные участки атеросклеротического перерождения. Поскольку стволовые клетки используют при взаимодействии с ЭК те же клеточные механизмы, что и зрелые формы клеток [Levesque et al, 1995; Voermans et al, 2000; Whetton, Graham, 1999], они, по-видимому, также могут адгезировать на активированный эндотелий и проникать в субэндотелиальное пространство. Исследования, проводимые в НИИ экспериментальной кардиологии с 80-х годов, позволили впервые обнаружить в интиме аорты человека не только описанные ранее клеточные элементы, но и гемопоэтические и стромальные КОЕ [Соболева и др., 1989; Romanov et al, 1995; Soboleva et al, 1995,1999].

Данные о присутствии в интиме гемопоэтических и стромальных клеток-предшественников позволяют объяснить сразу два парадокса, связанных с результатами исследования пролиферации интимальных клеток, описанными в работах многих авторов. С одной стороны, в этих работах увеличение массы моноцитов-макрофагов объясняется не только их миграцией сквозь эндотелий, сколько пролиферацией в толще интимы. При этом игнорируется факт, что только незрелые элементы, т. е. клетки-предшественники или КОЕ, способны к пролиферации. С другой, — сходным образом, могут быть пересмотрены и данные, касающиеся факта пролиферации ГМК, что, как и раньше, так и в последнее время вызывает серьезные возражения у ряда авторов. И то и другое, подразумевает присутствие в интиме тех самых двух условий, о которых говорилось в начале данного раздела: участков активированного эндотелия и специфического микроокружения.

Описанная последовательность событий представляется наиболее вероятной, впрочем, нельзя исключить и еще один механизм с участием стволовых клеток. Источником клеток-предшественников и/или созревающих форм клеток гематогенного происхождения может быть не периферическая кровь, а сама интима, сохранившая зарезервированные «дремлющие» стволовые клетки, попавшие туда в период внутриутробного развития плода [Tavian et al, 1996]. В данном случае, роль запускающего их пролиферацию и дифференцировку фактора может выполнять микроокружение, сформированное в результате воспалительного, репаративного или иного процесса.

Как бы то ни было, существованием подобных клеточных элементов можно объяснить возникновение большинства известных форм атеросклеротического поражения, таких как фиброз, липофиброз, образование хрящеи костеподобных структур, кальцификацию и т. д. [Romanov et al, 2003]. Это еще раз подтверждает, что атеросклероз — заболевание, затрагивающее многие аспекты жизнедеятельности организма, и, по всей видимости, заболевание системное.

Показать весь текст

Список литературы

  1. А.С., Крушинский А. В., Николаева М. А. и др. Первичная культура эндотелиальных клеток из пупочной вены человека: идентификация и характеристика растущей и конфлуэнтной культуры // Цитология, 1981, 23: 11 541 159.
  2. Ю.В., Бабушкина Т. Г. Структурно-функциональное состояние эндотелия аорты кроликов в условиях экспериментальной гиперхолестеринемии // «Актуальные проблемы патогенеза атеросклероза», JL, 1985, с. 36−37.
  3. A.M., Розинова В. М. Эндотелий артерий при атеросклерозе у человека // Бюлл. ВКНЦ АМН СССР, 1981,4: 9−14.
  4. В.В., Зайкина О. Э., Бондаренко М. Ф., Репин В.С Гетерогенность эндотелия аорты и артерий человека: количественное изучение с помощью растровой электронной микроскопии // Кардиология, 1983, 8: 92−95.
  5. В.Ф. Многоядерные клетки (образование, строение, биологическое значение) // Арх. Анат. Гистол. Эмбриол., 1984, 37(12): 80−86.
  6. О.П., Балясникова И. В., Локтионова С. А. Пролиферативное поведение культивируемых эндотелиальных клеток аорты человека и экспрессия молекул адгезии // Бюлл. Эксп. Биол. Мед., 1996, 122 (8): 214−217.
  7. Н.В. Повреждение и репарация эндотелия сосудов человека: возможная роль в атерогенезе // Дисс. канд. мед. наук, Москва, 1990 г., 102 с.
  8. Н.В., Антонов А. С. Устойчивость эндотелиальных клеток человека к повреждению холестан-Зр, 5а, бР-триолом и защитные эффекты препаратов, повышающих внутриклеточный уровень цАМФ // Проблемы атеросклероза, М.: Внешторгиздат, 1991. С. 64−75.
  9. Каменская H. J1. Морфология эндотелия грудной аорты человека // ДАН СССР, 1952, 83(5): 741−744.
  10. Н.Л. Эндотелий эмбриональной аорты человека // ДАН СССР, 1956,110(6): 1096−1099.
  11. Я.Л., Алимов Г. А., Миронов А. А. Общая морфология сосудистого эндотелия // В кн. «Сосудистый эндотелий», Киев, «Здоров'я», 1986, с. 78−121.
  12. Я.Л., Миронов В. А., Миронов А. А. Сосудистый эндотелий при старении // там же, с. 200−208.
  13. Г. П. Невесомость и элементарные биологические процессы // Л-М., 1988.
  14. Ю.А. Гетерогенность эндотелия сосудов человека: связь с атеросклерозом и механизмы возникновения // Дисс. канд. мед. наук, Москва, 1989 г., 148 с.
  15. Ю.А., Антонов А. С. Морфологические и функциональные особенности эндотелия аорты человека. 1. Два варианта организации эндотелиального монослоя при атеросклерозе // Цитология, 1991, 33 (3): 7−15.
  16. Ю.А., Антонов А. С. Морфологические и функциональные особенности эндотелия аорты человека. 2. Клеточный полиморфизм и включение 3Н-тимидина в культуре // Цитология, 1992, 34(2): 13−20.
  17. В.Н., Романов Ю. А., Антонов А. С., Корнхилл Дж.Ф., Хердерик Е. Е. Морфологические особенности эндотелия аорты человека при атерогенезе // В кн.: «Проблемы атеросклероза» под ред. Е. И. Чазова, 1991, М.: Внешторгиздат, с. 4−16.
  18. М.Г. О механизме восприятия гравитационного стимула клеткой // Авиакосм, и Эколог. Мед., 1994, 1: 10−17.
  19. М.Г. Общие принципы гравичувствительности клеток // Изв. РАН (сер. биол.)., 1996,2: 133−140.
  20. М.Г. Гравитационная биология клетки // М. 1997.
  21. Aarden L.A., De Groot E.R., Schaap O.L., et al. Production of hybridoma growth factor by monocytes // Eur. J. Immunol., 1987,17: 1411−1416.
  22. Adams D.O., Hamilton T.A. The cell biology of macrophage activation // Annu. Rev. Immunol., 1984,2: 283−318.
  23. Albeda S.M., Buck C.A. Integrins and other cell adhesion molecules // FASEB J., 1990,4: 2868−2880.
  24. Albeda S.M., Muller W.A., Buck C., Mewman P.J. Molecular and cellular properties of PECAM-1 (endo-CAM/CD31): a novel vascular cell-cell adhesion molecule // J. Cell Biol., 1991,114: 1059−1068.
  25. Albeda S.M., Smith C.W., Ward P.A. Adhesion molecules and inflammatory injury // FASEB J., 1994, 8: 504−512.
  26. Allen P.M., Unanue E.R. Antigen processing and presentation at a molecular level // Adv. Exp. Med. Biol., 1987, 225: 147−154.
  27. Alterman R.L., Stanley E.R. Colony-stimulating factor-1 expression in human glioma // Mol. Chem. Neuropath., 1994, 21: 177−188.
  28. Andersson J., Bjork L., Dinarello C.A., et al. Lipopolysacharide induces human interleukin-1 receptor antagonist and interleukin-1 production in the same cell // Eur. J. Immunol., 1992, 22: 2617−2623.
  29. Andreeva E.R., Rekhter M.D., Romanov Yu.A., et al. Stellate cells of aortic intima: Arborization of intimal cells in culture // Tissue & Cell, 1992,24 (5): 697−704.
  30. Andus Т., Gieger Т., Hirano Т., et al. Recombinant human В cell stimulatory factor 2 (BSF-2/IFN-P2) regulates p-fibrinogen and albumin mRNA levels in Fao-9 cells // Febs. Lett., 1987, 221: 18−22.
  31. Anitschkov N. Uber die veranderungen der kaninchenaorta bei experimenteller cholesterin-steatose. Beitr. Pathol. Anat. Allgem. Pathol., 1913, 56: 379−405.
  32. Antonelli-Orlidge A., Saunders K.B., Smith S.R., D’Amore P.A. An activated form of transforming growth factor p is produced by co-cultures of endothelial cells and pericytes // Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1989, 86: 4544−4548.
  33. Aqel N.M., Ball R.I., Waldman H., Mitchinson M.J. Monocytic origin of foam cells in human atherosclerotic plaques // Arteriosclerosis, 1987,1: 9−23.
  34. Arbeille P., Achaibou F., Fomina G., et al. Regional blood flow in microgravity: adaptation and deconditioning // Med. Sci. Sports. Exerc., 1996, 28: S70-S79.
  35. Arciniegas E., Sutton A.B., Allen T.D., Schor A.M. Transforming growth factor beta-1 promotes the differentiation of endothelial cells into smooth muscle-like cells in vitro//J. Cell. Sci., 1992, 103: 521−529.
  36. Arend W.P. Interleukin-1 receptor antagonist//Adv. Immunol., 1993, 54: 167−227.
  37. Armitage J.O. Emerging applications of recombinant human granulocyte-macrophage colony-stimulating factor// Blood, 1998, 92: 4491−4508.
  38. Arnaout M.A. Structure and function of the leukocyte adhesion molecules CD 11/CD 18// Blood, 1990, 75: 1037−1050.
  39. Asada M., Furukawa K., Kantor C., et al. Structural study of the sugar chains of the human leukocyte cell adhesion molecules CD11/CD18 // Biochemistry, 1991, 30: 15 711 577.
  40. Augsburger J.J., Henry R. Retinal aneurysms in adult cytomegalovirus retinitis // Am. J. Ophthalmol., 1978, 86: 794−797.
  41. Auron P.E., Warner S.J., Webb A.C., et al. Studies on the molecular nature of human interleukin-1 //J. Immunol., 1987, 138: 1447−1456.
  42. Babaev V.R., Antonov A.S., Zakharova O.S., et al. Identification of intimal subendothelial cells from human aorta in primary culture // Atherosclerosis, 1988, 71: 4556.
  43. Bagbay G.C. Interleukin 1 stimulates granulocyte macrophage colony-stimulating activity release by vascular endothelial cells // J. Clin. Invest., 1986, 78: 1316−1323.
  44. Baird A., Florkiewicz R.Z., Maher P., et al. Association of basic fibroblast growth factor with herpes simplex virus 1 mediates virion penetration into vascular cells // Nature, 1990, 348: 344−346.
  45. Bakouche O., Brown D.C., Lachman L.B. Subcellular localization of human monocyte interleukin-1: evidence for an inactive precursor molecule and a possible mechanism for IL 1 release // J. Immunol., 1987, 138: 4249−4255.
  46. Baranovski A., Adams C.W.M., Bayliss O.B., Bowyer D.B. Connective tissue responses to oxisterols // Atherosclerosis, 1982,410: 255−261.
  47. Barbe P., Galitzky J., De Glisezinski I., et al. Simulated microgravity increases beta-adrenergic lipolysis in human adipose tissue // J. Clin. Endocrinol. Metab., 1998, 83: 619−625.
  48. Baroja M.L., Ceuppens J.L., Van Damme J., Billiau A. Cooperation between an anti-T cell (anti-CD28) monoclonal antibody and monocyte-produced IL-6 in the induction of T cell responsiveness to IL-2 // J. Immunol., 1988,141: 1502−1507.
  49. Bartelmez S.H., Bradley T.R., Bertoncello I., et al. Interleukin 1 plus interleukin 3 plus colony-stimulating factor 1 are essential for clonal proliferation of primitive myeloid bone marrow cells // Exp. Hemathol., 1989, 17: 240−245.
  50. Bassenge E. Endothelial function in different organs // Progr. Cardiovasc. Dis., 1986,39: 209−228.
  51. Basson C.T., Kocher O., Basson M.D., et al. Differential modulation of vascular cell integrin and extracellular matrix expression in vitro by TGF-P 1 correlates with reciprocal effects on cell migration // J. Cell Physiol., 1992, 153: 118−128.
  52. Baumann H., Jahreis G., Sauder D.N., Koj A. Human keratinocytes and monocytes release factors which regulate the synthesis of major acute phase plasma proteins in hepatic cells from man, rat and mouse // J. Biol. Chem., 1984, 259: 7331−7342.
  53. Bazzoni F., Cassatella M.A., Rossi F., et al. Phagocytosing neutrophyls produce and release high amounts of the neutrophil-activating peptide-l/interleukin-8 // J. Exp. Med., 1991, 173:771.
  54. Becker J.C., Kolanus W., Lonnemann C., Schmidt R.E. Human natural killer clones enhance in vitro antibody production by tumor necrosis factor alpha and gamma interferon // Scand. J. Immunol., 1990, 32: 153.
  55. Bell J.J., Sargent Т.Е., Watson J.A. Inhibition of 3-hydroxy-3-methylglutaryl coenzyme A reductase activity in hepatoma tissue culture cells by pure cholesterol and several cholesterol derivatives // J. Biol. Chem., 1976, 251: 1945−1948.
  56. Benditt E.P., Benditt J.M. Evidence for a monoclonal origin of human atherosclerotic plaques // Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1973, 70: 1753−1756.
  57. Benjamin D., Knoblach T.J., Dayton M.A. Human interleukin-10: В cell lines derived from patients with AIDS and Burkitt’s lymphoma constitutively secrete large quantities of interleukin 10 // Blood, 1992, 80: 1289−1298.
  58. Bereta J., Bereta M., Coffman F.D., et al. Inhibition of basal and tumor necrosis factor-enhanced binding of murine tumor cells to murine endothelium by transforming growth factor-pi //J. Immunol., 1992, 148: 2932.
  59. Berg M., James S.P. Human neutrophils release the Leu-8 lymph node homing receptor during cell activation // Blood, 1990,76: 2381−2388.
  60. Beschorner W.E., Hutchins G.M., Burns W.H., et al. Cytomegalovirus pneumonia in bone marrow transplant recipients: miliary and diffuse patterns // Am. Rev. Respir. Dis., 1980,122: 107−114.
  61. Beuscher H.U., Guenther C., RoellinghoffM. IL-lp is secreted by activated murine macrophages as biologically inactive precursor//J. Immunol., 1990,144: 2179−2183.
  62. Beutler В., Krochin N., Milsark I.W., et al. Control of cachectin (tumor necrosis factor) synthesis: mechanism for endotoxin resistance // Science, 1986,232: 977.
  63. Beutler В., Tkacenko V., Milsark I., et al. Effect of gamma interferon on cachectin expression by mononuclear phagocytes. Reversal of the lpsd (endotoxin resistance) phenotype // J. Exp. Med., 1986, 164: 1791−1796.
  64. Bevilacqua M.P. Endothelial-leukocyte adhesion molecules // Annu. Rev. Immunol., 1993,11: 767−804.
  65. Bevilacqua M.P., Pober J.S., Mendrick D.L., et al. Identification of an inducible endothelial-leukocyte adhesion molecule // Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1987, 84: 92 389 242.
  66. Bevilacqua M.P., Pober J.S., Wheeler M.E., et al. Interleukin-1 acts on cultured human vascular endothelium to increase the adhesion of polymorphonuclear leukocytes, monocytes, related leukocyte cell lines // J. Clin. Invest., 1985, 76: 2003−2011.
  67. Bevilacqua M.P., Stengelin S., Gimbrone M.A.Jr., Seed B. Endothelial leukocyte adhesion molecule 1: an inducible receptor for neutrophils related to complement regulatory proteins and lectins // Science, 1989,243: 1160−1165.
  68. Bing R.J., Sarma J.S.M. In vitro inhibition of cholesterol uptake in human and animal arteries by 7-ketocholesterol // Biochem. Biophys. Res. Commun., 1975, 62: 711 716.
  69. Bochner B.S., Klunk D.A., Sterbinsky S.A., et al. IL-13 selectively induces vascular cell adhesion molecule-1 expression in human endothelial cells // J. Immunol., 1995,154: 799−803.
  70. Bogdan C., Vodovotz Y., Nathan C. Macrophage deactivation by interleukin 10 // J. Exp. Med., 1991,174: 1549−1555.
  71. Bonfanti R., Furie B.C., Furie В., Wagner D.D. PADGEM (GMP-140) is a component of Weibel-Palade bodies of human endothelial cells // Blood, 1989: 1109−1112.
  72. Border W.A., Ruoslahti E. Transforming growth factor-P in disease: the dark side of tissue repair// J. Clin. Invest., 1992, 90: 1−7.
  73. Bot F.J., Van Eijk L., Broeders L., et al. Interleukin 6 synergizes with M-CSF in the formation of macrophage colonies for purified human marrow progenitor cells // Blood, 1989, 73: 435−437.
  74. Briscoe D.M., Cotran R.S., Pober J.S. Effects of tumor necrosis factor, lipopolysacharide, and IL-4 on the expression of vascular cell adhesion molecule 1 in vivo. Correlation with CD3+ T cell infiltration // J. Immunol., 1992, 149: 2954−2960.
  75. Brogi E., Wu Т., Namika A., Isner J.M. Indirect angiogenic cytokines upregulates VEGF and bFGF gene expression in vascular smooth muscle cells, whereas hypoxia upregulates VEGF expression only // Circulation, 1994, 90: 649−652.
  76. Brown M.A., Hural J. Functions of IL-4 and control of its expression // Crit. Rev. Immunol., 1997,17: 1−32.
  77. Brown M.R., Vaughan J., Jimenezz L.L., et al. Transforming growth factor-p: role in mediating serum-induced endothelin production by vascular endothelial cells // Endocrinology, 1991, 129: 2355−2360.
  78. Brown P.D., Wakefield L.M., Levinson A.D., Sporn M.B. Physiochemical activation of recombinant transforming growth factor-betas 1, 2, and 3 // Growth Factors, 1990, 3: 35−43.
  79. Bruckdorfer K.R., Demel R.A., De Cier J., Van Deenan L.L.M. The effect of partial replacements of membrane cholesterol by other steroids on the osmotic fragility and glycerol permeability of erythrocytes // Biochem. Biophys. Acta, 1969, 183: 334−338.
  80. Bruggeman C.A., Debick W.M.H., Grauls G., van Boven C.P.A. Cytomegalovirus infection of rat endothelial cells in vitro // Arch. Virol., 1986, 87: 265−272.
  81. Brunner A.M., Marquardt H., Malacko A.R., et al. Site-directed mutagenesis of cysteine residues in the pro region of the transforming growth factor pi precursor // J. Biol. Chem., 1989,264: 13 660−13 664.
  82. Burgess A.W., Metcalf D. The nature and action of granulocyte-macrophage colony stimulating factor// Blood, 1980, 56: 947−958.
  83. Bystrevskaya V.B., Lichkun V.V., Krushinski A.V., Smirnov V.N. Centriole modification in human aortic endothelial cells // J. Struct. Biol., 1992, 109: 1−12.
  84. Campbell I.K. Human articular cartilage and hondrocytes produce hemopoietic colony-stimulating factors in culture in response to IL-1 // J. Immunol., 1991, 147: 12 381 246.
  85. Caplan B.A., Schwartz C.J. Increased endothelial turnover in areas of in vivo Evans Blue uptake in the pig aorta // Atherosclerosis, 1973, 17: 401−417.
  86. Carlos Т., Kovach N., Schwartz В., et al. Human monocytes bind to two cytokine-induced adhesive ligands on cultured human endothelial cells: endothelial-leukocyte adhesion molecule-1 and vascular cell adhesion molecule-1 // Blood, 1991, 77: 2266−2271.
  87. Carlos T.M., Harlan J.M. Membrane proteins involved in phagocyte adherence to endothelium//Immunol. Rev., 1990, 114: 5−28.
  88. Carlos T.M., Schwartz B.R., Covach N.L., et al. Vascular cell adhesion molecule-1 adherence to cytokine-activated cultured human endothelial cells // Blood, 1990, 76: 965 970.
  89. Carswell E.A., Old L.J., Kassel R.L., et al. An endotoxin-induced serum factor that causes necrosis of tumors // Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1975, 72: 3666.
  90. Cassatella M. A. The production of cytokines by polymorphonuclear neutrophyls // Immunol. Today, 1995, 16: 21−33.
  91. Castell J.V., Geiger Т., Gross V., et al. Plasma clearance, organ distribution and target cells of interleukin-6/hepatocyte-stimulating factor in the rat // Eur. J. Immunol., 1988,177: 357−361.
  92. Castello J.J., Addonizio M.L., Rosenberg R., Kaenovsky M.J. Cultured endothelial cells produce a heparinlike inhibitor of smooth muscle cells growth // J. Cell Biol., 1981, 90: 372−379.
  93. Cayphas S., Van Damme J., Vink A., et al. Identification of an interleukin HPl-like plasmacytoma growth factor produced by L cells in response to viral infection // J. Immunol., 1987,139: 2965−2969.
  94. Chantry D., Turner M., Abney M., et al. Modulation of cytokine production by transforming growth factor-P // J. Immunol., 1989, 142: 4295−4300.
  95. Childs В., Emanuel D. Cytomegalovirus infection and compromise // Exp. Hematol., 1993,21: 198−200.
  96. Chin D.J., Gill G., Faust J.R., et al. Sterols accelerate degradation of hamster 3-hydroxy-3-methylglutaryl coenzyme A reductase by a constitutionally expressed cDNA // Mol. Cell. Biol., 1985, 5: 634−641.
  97. Chopra V., Dinh T.V., Hannigan E.V. Three-dimentional endothelial-tumor epithelial cell interactions in human cervical cancer // In Vitro Cell Dev. Biol. Anim., 1997,33: 432−442.
  98. Cines D.B., Lyss A.P., Bina M., et al. Fc and C3 receptors induced by herpes simplex virus on cultured human endothelial cells // J. Clin. Invest., 1982, 69: 123−128.
  99. Cogoli A. The effect of hypogravity and hypergravity on cells of the immune system // J. Leukoc. Biol., 1993, 54: 259−268.
  100. Cogoli A., Cogoli-Greuter M. Activation and proliferation of lymphocytes and other mammalian cells in microgravity // Adv. Space Biol. Med., 1997, 6: 33−79.
  101. Cogoli A., Valluchi-Morf M., Mueller M., Briegleb W. Effect of hypogravity on human lymphocyte activation // Aviat. Space Environ. Med., 1980, 51: 29−34.
  102. Collins Т., LaPierre L.A., Fiers W., et al. Recombinant tumor necrosis factor increases mRNA levels and surface expression of HLA-A, B antigens in vascular endothelial cells and fibroblasts in vitro // Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1986, 83: 446.
  103. Colotta F., Re F., Musio M., et al. Interleukin-1 type II receptor: a decoy target for IL-1 that is regulated by IL-4 // Science, 1993, 261: 472−475.
  104. Convertino V.A., Polet J.L., Engelke K.A., et al. Evidence for increased beta-adrenoreceptor responsiveness induced by 14 days of simulated microgravity in humans // Amer. J. Physiol., 1997, 273: R93-R99.
  105. Cornhill J.F., Barrett W.A., Herderick E.E., et al. Topographic study of sudanophylic lesions in cholesterol-fed minipigs by image analysis // Arteriosclerosis, 1985,5:415−426.
  106. Cornhill J.F., Roach M.R. A quantitative study of the localization of atherosclerotic lesions in the rabbit aorta // Atherosclerosis, 1976,23: 489−501.
  107. Cotran R.S., Gimbrone M.A.Jr., Bevilacqua M.P., et al. Induction and detection of a human endothelial activation antigen in vivo // J. Exp. Med., 1986,164: 661−666.
  108. Cotton R.J., Wartman W.B. Endothelial patterns in human arteries. Their relationship to the age, vessel site and atherosclerosis // Arch. Pathol., 1961,71: 3−12.
  109. Cybulsky M.I., Gimbrone M.A. Endothelial expression of a mononuclear leukocyte adhesion molecule during atherogenesis II Science, 1991, 251: 788−791.
  110. Dallas S.A., Miyazono K., Skerry T.M., et al. Dual role for the latent transforming growth factor-P binding protein in storage of latent TGF-P in the extracellular matrix and as a structural matrix protein II J. Cell Biol., 1995, 131: 539−549.
  111. Damle N.K., Klussman K., Linsley P. S., Aruffo A. Differentially costimulatory effects of adhesion molecules B7, ICAM-1, LFA-3, VCAM-1 on resting and antigen-primed CD4+ T lymphocytes // J. Immunol., 1992, 148: 1985−1992.
  112. Davies P.F. Vascular cell interaction with special reference to the pathogenesis of atherosclerosis //Lab. Invest., 1986, 55: 5−24.
  113. A., P-selectin mediates Ca -dependent adhesion of activated platelets to many different types of leukocytes: detection by flow cytometry // Blood., 1992, 80: 134−142.
  114. Dejana E., Corada M., Lampugnani M.G. Endothelial cell-to-cell junctions // FASEB J., 1995,9:910−918.
  115. DiCorletto P.E. Cultured endothelial cells produce multiple growth factors for connective tissue cells // Exp. Cell Res., 1984, 153: 167−172.
  116. DiCorletto P.E., Fox P.F. Growth factor production by endothelial cells // In: Endothelial cells, 1988, CRC Press, Florida, pp. 51−61.
  117. Dinarello C.A. Biologic basis for interleukin-1 in disease // Blood, 1996, 87: 20 952 147.
  118. Dinarello C.A. Interleukin-1 // Cytokine & Growth Factor Rev., 1997, 8: 253−265.
  119. Dinarello С.A. Interleukin-1, interleukin-1 receptor and interleukin-1 receptor antagonist // Int. Rev. Immunol., 1998,16: 457−499.
  120. Dinarello C.A., Cannon J.G., Wolff S.M., et al. Tumor necrosis factor (cachectin) is an endogenous pyrogen and induces production of interleukin-1 // J. Exp. Med., 1986, 163: 1433.
  121. Ding L., Shevach E.M. IL-10 inhibits mitogen-induced T cell proliferation by selectively inhibiting macrophage costimulatory function // J. Immunol., 1992, 148: 31 333 139.
  122. Dleu J.Y., Blanchard D.K., Halkias D., Friedman H. Growth inhibition of Candida albicans by human polymorphonuclear neutrophils: activation by interferon- and tumor necrosis factor//J. Immunol., 1986, 137: 2980.
  123. Dobrina A., Menegazzi R., Carlos T.M., et al. Mechanisms of eosinophil adherence to cultured vascular endothelial cells // J. Clin. Invest., 1991, 88: 20−26.
  124. Docke W.D., Prosch S., Fietze E., et al. Cytomegalovirus reactivation and tumor necrosis factor//Lancet, 1994, 343: 268−269.
  125. Dolecki G.J., Connolly D.T. Effects of a variety of cytokines and inducing agents on vascular permeability factor mRNA levels in U937 cells // Biochem. Biophys. Rec. Commun., 1991,180: 572−578.
  126. Domke-Opiz I., Kirchner H. Stimulation of macrophages by endotoxin results in the reactivation of persistent herpes simplex virus infection // Scand. J. Immunol., 1990, 32: 69.
  127. Doukas J., Pober J.S. IFN-gamma enhances endothelial activation induced by tumor necrosis factor but not IL-1 // J. Immunol., 1990,145: 1727−1733.
  128. Dubravec D.B., Spriggs D.R., Mannick J.A., Rodrick M.L. Circulating human peripheral blood granulocytes synthesize and secrete tumor necrosis factor a // Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1990, 87: 6758.
  129. Dudding L., Haskel S., Klark B.D., et al. Cytomegalovirus infection stimulates expression of monocyte associated mediator genes //J. Immunol., 1989, 143: 3343−3352.
  130. Dustin M.L., Rothlein R., Bhan A.K., et al. Induction by IL-1 and interferon-y: tissue distribution, biochemistry, function of a natural adherence molecule (ICAM-1) // J. Immunol., 1986,137: 245−254.
  131. Edelman G.M. Morphoregulation // Dev. Dyn., 1992, 193: 2−10.
  132. Efskind L. Die Veranderungen im gefassepithel bei arteriosclerose // Acta Pathol. Microbiol. Scand., 1941,18: 259−276.
  133. Emilie D., Crevon M.C., Auffredou M.T., Galanaud P. Glucocorticosteroid synergy between interleukin 1 and interleukin 6 for human В lymphocyte differentiation // Eur. J. Immunol., 1988,18: 2043−2047.
  134. Endothelial heterogeneity and intimal blood-borne cells. Relation to human atherosclerosis // Ann. N.Y. Acad. Sci., 1995, 748: 12−37.
  135. Enenstein J., Waleh N.S., Kramer R.H. Basic FGF and TGF-P differentially modulate integrin expression of human microvascular endothelial cells // Exp. Cell Res., 1992,203:499−503.
  136. Erger R.A., Casale T.B. Interleukin-8 is a potent mediator for eosinophil chemotaxis through endothelium and epithelium // Amer. J. Physiol., 1995, 268: LI 17-L122.
  137. Etingin O.R., Silverstein R.L., Friedman H.M., Hajjar D.P. Viral activation of the coagulation cascade: Molecular interactions at the surface of infected endothelial cells // Cell, 1990,61:657−662.
  138. Etingin O.R., Silverstein R.L., Hajjar D.P. Identification of a monocyte receptor on herpes virus-infected endothelial cells // Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1991, 88: 7200−7203.
  139. Everett J.P., Hershberger R.E., Norman D.J., et al. Prolonged cytomegalovirus infection with viremia is associated with development of cardiac allograft vasculopathy // J. Heart Lung Transplant., 1992, 11: S133-S137.
  140. Fabricant C.G., Fabricant J., Litrenta M.M., Minick C.R. Virus-induced atherosclerosis // J. Exp. Med., 1978,148: 335−340.
  141. Fabricant C.G., Fabricant J., Minick C.R., Litrenta M.M. Herpes-virus induced atherosclerosis in chickens // Fed. Proc., 1983,42: 2476−2479.
  142. Fabricant C.G., Krook L., Gillespie J.H. Virus-induced cholesterol crystals // Science, 1973,181: 566−567.
  143. Faggiotto A., Ross R. Harker L. Studies of hypercholesterolemia in the nonhuman primates. I. Changes that lead to fatty streak formation // Arteriosclerosis, 1984, 4: 323 340.
  144. Fajardo L.F., Prionas S.D., Kwan H.H., et al. Transforming growth factor pi induces angiogenesis in vitro with a threshold pattern // Lab. Invest., 1996,74: 600−608.
  145. Fantuzzi G., Ku G., Harding M.V., et al. Response to local inflammation of IL-ip converting enzyme-deficient mice//J. Immunol., 1997, 158: 1818−1824.
  146. Farber H.W., Antonov A.S., Romanov Yu.A., et al. Cytokine secretion by human aortic endothelial cells is related to degree of atherosclerosis // Amer. J. Physiol., 1992, 262: H1088−1095.
  147. Farrar M.A., Schreiber R.D. The molecular cell biology of interferon-y and its receptor//Annu. Rev. Immunol., 1993, 11: 571−611.
  148. Farrar W.L., Rirchenall-Sparks M.C., Young H.B. Interleukin-2 induction of interferon-gamma mRNA synthesis//J. Immunol., 1986, 137: 3836−3840.
  149. Filonzi E.L. Cytokine regulation of granulocyte-macrophage colony-stimulating factor and macrophage colony-stimulating factor production in human arterial smooth muscle cells // Atherosclerosis, 1993, 99: 241−252.
  150. Fiorentino D.F., Zlotnik A., Mosmann T.R., et al. IL-10 inhibits cytokine production by activated macrophages // J. Immunol., 1991, 147: 3815−3822.
  151. Flaumenhaft R., Abe M., Mignatti P., Rifkin D.B. Basic fibroblast factor-induced activation of transforming growth factor-P in endothelial cells: regulation of plasminogen activator activity // J. Cell Biol., 1992, 118: 901−909.
  152. Flaumenhaft R., Abe M., Sato Y., et al. Role of the latent TGF-P binding protein in the activation of latent TGF-P by co-cultures of endothelial and smooth muscle cells // J. Cell Biol., 1993,120: 995−1002.
  153. Folks T.M., Clouse K.A., Justement J., et al. Tumor necrosis factor a induces expression of human immunodeficiency virus in a chronically infected T-cell clone // Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1989, 86: 2365.
  154. Foucar E., Mukai K., Foucar K., et al. Colon ulceration in lethal cytomegalovirus infection // Amer. J. Clin. Pathol., 1981, 76: 788−801.
  155. Frank J.M., Kaneko S., Joels C., et al. Microcirculation research, angiogenesis, and microsurgery//Microsurgery, 1994, 15: 399−404.
  156. Frei K., Malipiero U.V., Leist T.P., et al. On the cellular source and function of interleukin 6 produced in the central nervous system in viral diseases // Eur. J. Immunol., 1989,19: 689−694.
  157. Frenkel N., Schirmer E.C., Wyatt L.S., et al. Isolation of a new herpesvirus from human CD4+ T cells // Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1990, 87: 748−752.
  158. Friedman H.M., Cohen G.H., Eisenburg R.J., et al. Glycoprotein С of herpes simplex virus 1 acts as a receptor for the C3b complement component of infected cells // Nature, 1984,309: 633−635.
  159. Fujinami R.S., Nelson J.A., Walker L., Oldstone M.B. Sequence homology and immunologic cross reactivity of human cytomegalovirus with LHA-DR beta chain: a means for graft rejection and immunosuppresion // J. Virol., 1988, 62: 100−105.
  160. Fujita Т., Reis L.F.L., Watanabe N., et al. Induction of transcription factor IRF-1 and interferon-P mRNA by cytokines and activators of second messenger pathways // Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1989, 86: 9936.
  161. Fuller A.O., Spear P.G. Anti-glycoprotein D antibodies that permit adsorption but block infection by herpes simplex virus 1 prevent virion-cell fusion at the cell surface // Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1987, 84: 5454−5458.
  162. Gajewski T.F., Schell S.R., Nau G., Fitch F.W. Regulation of T cell activation: differences among T cell subsets II Immunol. Rev., 1989, 111: 79−100.
  163. Galea P., Thibault G., Lacord M., et al. II J. Immunol. 1993. — Vol. 151. — P. 588 596.
  164. Gallatin W.M., Wiessman I.L., Butcher E.C. A cell-surface molecule involved in organ-specific homing of lymphocytes // Nature, 1983, 304: 30−34.
  165. Gamble G.R., Harlan J.M., Klebanoff S.J., Vadas M.A. Stimulation of the adherence of neutrophyls to umbilical vein endothelium by human recombinant tumor necrosis factor//Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1985, 82: 8667−8671.
  166. Gamble J.R., Bradley S., Noack L., Vadas M.A. TGF-P and endothelial cells inhibit VCAM-1 expression in human vascular smooth muscle cells // Arterioscler. Thromb. Vase. Biol., 1995, 15:949−955.
  167. Gamble J.R., Khew-Goodall Y., Vadas M.A. Transforming growth factor-P inhibits E-selectin expression in human endothelial cells // J. Immunol., 1993,150: 4494−4503.
  168. Gamble J.R., Skinner M.P., Berndt M.C., Vadas M.A. Prevention of activated neutrophil adhesion to endothelium by soluble adhesion protein GMP-140 // Science, 1990,249:414−417.
  169. Gamble J.R., Vadas M.A. Endothelial adhesiveness for blood neutrophils is inhibited by transforming growth factor-P // Science, 1988, 242: 97−99.
  170. Gamble J.R., Vadas M.A. Endothelial cell adhesiveness for human T lymphocytes is inhibited by TGF-p // J. Immunol., 1991,146: 1149−1154.
  171. Garman R.D., Jacobs K.A., Clark S.C., Raulet D.H. B-cell-stimulatory factor 2 (P2 interferon) functions as a second signal for interleukin 2 production by mature murine T cells // Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1987, 84: 7629−7633.
  172. Gatenby P.A., Cansas G.S., Xian C.Y., et al. Dissection of immunoregulatory subpopulations of T lymphocytes within the helper and suppressor sublineages in man // J. Immunol., 1982,129: 1997−2000.
  173. Gauchat J., Henchoz S., Mazzei G., et al. Induction of human IgE synthesis in В cell by mast cells and basophils // Nature (Lond.), 1993, 365: 340−343.
  174. Gaynor E. Increased mitotic activity in rabbit endothelium after endotoxin. An autoradiographic study // Lab. Invest., 1971, 24: 318−320.
  175. Geng J.-G., Bevilacqua M.P., Moore K.L., et al. Rapid neutrophil adhesion to activated endothelium mediated by GMP-140 //Nature, 1990, 343: 757−760.
  176. Gerrity R.G. The role of the monocytes in atherogenesis: I. Transition of blood-borne monocytes into foam cells in fatty lesions // Amer. J. Pathol., 1981,103: 181−190.
  177. Gerrity R.G., Richardson M., Caplan B.A., et al. Endotoxin-induced vascular endothelial injury and repair. II. Focal injury, en face morphology, (3H) thymidine uptake and circulating endothelial cells in the dog // Exp. Mol. Pathol., 1976,24: 59−69.
  178. Gerrity R.J., Naito H.K., Richardson M., Schwartz C.J. Dietary induced atherogenesis in swine: morphology of the intima in prelesion stages // Amer. J. Pathol., 1979, 95: 775−792.
  179. Giachelli C.M., Bae N., Almeida M., et al. Osteopontin is elevated during neointima formation in rat arteries and is a novel component of human atherosclerotic plaque //J. Clin. Invest., 1993, 92: 1686−1696.
  180. Gibbs C.P., Nazerian K., Velicer L.F., Kung H.J. Extensive homology exists between Marek disease herpesvirus and its vaccine virus, herpesvirus of turkeys // Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1984,81: 3365−3369.
  181. Gimbrone M.A. Endothelial disfunction and atherosclerosis // J. Cardiac. Surg., 1989,4: 180−183.
  182. Gimbrone M.A., Bevilacqua M.P., Cybulsky M.I. Endothelial-dependent mechanism of leukocyte adhesion in inflammation and atherosclerosis // Ann. NY Acad. Sci., 1990, 598: 77 85.
  183. Gimbrone M.A., Bevilacqua M.P., Cybulsky M.I. Endothelial-dependent mechanism of leukocyte adhesion in inflammation and atherosclerosis // Ann. N.Y. Acad. Sci., 1990,598: 77−75.
  184. Gimbrone M.A., Cotran R., Folkman J. Human vascular endothelial cells in culture. Growth and DNA synthesis // J. Cell Biol., 1974, 60: 673−684.
  185. Gimbrone M.A.Jr., Obin M.S., Frock A.F., et al. Endothelial interleukin-8: a novel inhibitor of leukocyte-endothelial interactions//Science, 1989,246: 1601−1603.
  186. Ginsberg M.H., Loftus J.C., Plow E.F. Cytoadhesins, integrins, and platelets // Thromb. Haemostas., 1988, 59: 1−6.
  187. Glass J.R., De Witt R.G., Cress A.E. Rapid loss of stress fibers in Chinese hamster ovary cells after hyperthermia // Cancer Res., 1985,45: 258−262.
  188. Goode T.B., Davies P.F., Reidy M.A., Bowyer D.E. Aortic endothelial cell morphology observed in situ by scanning electron microscopy during atherogenesis in the rabbit// Atherosclerosis, 1977, 27: 235−251.
  189. Gown A.M., Tsukada Т., Ross R. Human atherosclerosis. II. Immunocytochemical analysis of the cellular composition of human atherosclerotic lesions // Amer. J. Pathol., 1986,125: 191−207.
  190. Graber N., Gopal T.V., Wilson D., et al. T cells bind to cytokine-activated endothelial cells via novel, inducible sialoglycoprotein and endothelial leukocyte adhesion molecule-1 //J.Immunol., 1990, 145: 819−830.
  191. Grattan M.T., Moreno-Cabral C.E., Starnes V.A., et al. Cytomegalovirus infection is associated with cardiac allograft rejection and atherosclerosis // JAMA, 1989,261: 35 613 566.
  192. Gray P.W., Goeddel D.V. Cloning and expression of murine immune interferon cDNA // Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1983, 80: 5842−5846.
  193. Gray P.W., Goeddel D.V. Structure of the human immune interferon gene // Nature, 1982, 298: 859−863.
  194. Gray P.W., Leung D.W., Pennica D., et al. Expression of human immune interferon cDNA in E. coli and monkey cells // Nature, 1982,295: 503−508.
  195. Greenfeder S.A., Nunes P., Kwee L., et al. Molecular cloning and characterization of a second subunit of the interleukin-1 receptor complex // J. Biol. Chem., 1995, 270: 13 757−13 765.
  196. Grob P.M., David E., Warren T.C., et al. Characterization of a receptor for human monocyte-derived neutrophil chemotactic factor/interleukin-8 // J. Biol. Chem., 1990, 265: 8311.
  197. Gruener R., Hoeger G. Vector-averaged gravity alters myocyte and neuron properties in cell culture // Aviat. Space Environ. Med., 1991, 62: 1159−1165.
  198. Gruener R, Hoeger G. Vector-free gravity disrupts synapse formation in cell culture // Amer. J. Physiol., 1990, 258: C489-C494.
  199. Guan J., Hynes R.O. Lymphoid cells recognize an alternatively spliced segment of fibronectin via the integrin receptor a4pi // Cell, 1990,60: 53−61.
  200. Hajjar D.P. Herpesvirus infection prevents activation of cytoplasmic cholesteryl esterase in arterial smooth muscle cells // J. Biol. Chem., 1986, 261: 7611−7614.
  201. Hajjar D.P. Viral pathogenesis of atherosclerosis. Impact of molecular mimicry and viral genes//Amer. J. Pathol., 1991,139: 1195−1211.
  202. Hajjar D.P., Fabricant C.G., Minick C.R., Fabricant J. Virus-induced atherosclerosis: Herpes virus infection alters aortic cholesterol metabolism and accumulation // Amer. J. Pathol., 1986,122: 62−70.
  203. Hajjar D.P., Falcone D.J., Fabricant C.G., Fabricant J. Altered cholesterol ester cycle is associated with lipid accumulation in herpesvirus infected avian arterial smooth muscle cells //J. Biol. Chem., 1985,260: 6124−6128.
  204. Hajjar D.P., Nicholson A.C., Hajjar K.A., et al. Decreased messenger RMA translation in herpesvirus-infected arterial cells. EfFecs on cholesteryl ester hydrolase // Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1989, 86: 3366−3370.
  205. Hajjar D.P., Pomerantz K.B., Falcone D.J., et al. Herpes simplex virus infection in human arterial cells: implications in atherosclerosis // J. Clin. Invest., 1987, 80: 1317−1321.
  206. Hajjar K.A., Hajjar D.P., Silverstein R.L., Nachman R.L. Tumor necrosis factor mediated release of platelet-derived growth factor from cultured endothelial cells // J. Exp. Med., 1987, 166: 235−245.
  207. Hakker B.C., Kuidjpers T.W., Leeuwenberg J.F.M., et al. Neutrophil and monocyte adherence to and migration across monolayers of cytokine-activated endothelial cells: the contribution of CD18, ELAM-1, VLA-4 // Blood, 1991, 78: 2721−2726.
  208. Hamburger S.A., McEver R.P. GMP-140 mediates adhesion of stimulated platelets to neutrophils//Blood, 1990, 75: 550−554.
  209. Hamilton J.A. GM-CSF in inflammation and autoimmunity // Trends Immunol., 2002,23: 403−408.
  210. Hamilton J.A. Stimulation of macrophage plasminogen activator activity by colony-stimulating factors // J. Cell. Physiol., 1980, 103: 435−445.
  211. Handman E., Burgess A.W. Stimulation of granulocyte-macrophage colony stimulating factor of Leishmania tropica killing by macrophages // J. Immunol., 1979, 122: 1134−1137.
  212. Hannum C.H., Wilcox С.J., Arend W.P., et al. Interleukin-1 receptor antagonist activity of a human interleukin-1 inhibitor//Nature, 1990, 343: 336−340.
  213. Hansson G.K., Bondjiers G. Endothelial proliferation and atherogenesis in rabbits with moderate hypercholesterolemia // Artery, 1980, 7: 316−329.
  214. Harlan J.M., Winn R.K., Vedder N.B., et al. In vivo models of leukocyte adherence to endothelium // In: Adhesion: Its role in inflammatory disease (Harlan J.M., Lui D.Y., Eds.), Freeman and Co, N.Y., pp. 117−150.
  215. Hart P.H., Vitti G.F., Burgess D.R., et al. Potential antiinflammatory effects of interleukin-4: suppression of human monocyte tumor necrosis factor alpha, interleukin-1, and prostaglandid E2 // Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1989, 86: 3803−3807.
  216. Henco K., Brosius J., Fujisawa A., et al., Structural relationship of human interferon alpha genes and pseudogenes // J. Molec. Biol., 1985,185: 227−260.
  217. Hendrix M.G.R., Dormans P.H.J., Kitselaar P., et al. The presence of CMV nucleic acids in arterial walls of atherosclerotic and non-atherosclerotic patients // Amer, J. Pathol., 1989, 134: 1151−1157.
  218. Hendrix M.G.R., Salimans M.M.M., van Boven C.P.A., Bruggeman C.A. High prevalence of latently present cytomegalovirus in arterial walls of patients suffering from grade III atherosclerosis // Amer. J. Pathol., 1990, 136: 23−28.
  219. Heng M.C.Y., Heng S.I., Allen S.G. Co-infection and synergy of human immunodeficiency virus-1 and herpes simplex virus-1 // Lancet, 1994, 343: 255−258.
  220. Henning В., Boissoneault G.A. Cholestane-3,5,6-triol decreases barrier function of cultured endothelial cells //Atherosclerosis, 1987, 68: 256−261.
  221. Herman I.M., Crisona N.J., Pollard T.D. Relation between cell activity and distribution of cytoplasmic actin and myosin // J. Cell Biol., 1981, 90: 84−91.
  222. Herold B.C., WuDunn D., Soltys N., Spear P.G. Glycoprotein С of herpes simplex virus type 1 plays a principal role in the adsorption of virus to cells ant the infectivity // J. Virol., 1991,65: 1090−1098.
  223. Hirota S., Imakita M., Kohri K., et al. Expression of osteopontin messenger RNA by macrophages in atherosclerotic plaques: possible association with calcification // Amer. J. Pathol., 1993,143: 1003−1008.
  224. Hirsh E.Z., Robertson A.L. Selective acute endothelial injury and repair. I. Methodology and surface characteristics // Atherosclerosis, 1977, 28:271−287.
  225. Ho D.D., Rota T.R., Andrews C.A., Hirsh M.S. Replication of human cytomegalovirus in endothelial cells // J. Infect. Dis., 1984, 150: 956−957.
  226. Ho W.Z., Harouse J.M., Rando R.F., et al. Reciprocal enhancement of gene expression and viral replication between human cytomegalovirus and human immunodeficiency virus type 1 //J. Gen. Virol., 1990, 71: 97−100.
  227. Hoang Т., Hanam A., Goncalves O., et al. Interleukin 6 enhances growth factor-dependent proliferation of the blast cells of acute myeloblasts leukemia // Blood, 1988, 72: 823−826.
  228. Hogg N. Roll, roll, roll your leukocyte gently down the vein. // Immunol. Today, 1992,13: 113−115.
  229. Honess D.J. Thermal enhancement of drug cytotoxicity in vivo and in vitro // Rec. Res. Cancer Res., 1988, 109: 161−169.
  230. Horvath C. Quantitative determination of cholesterol in autooxidation mixture by thin layer chromatography // J. Chromatogr., 1966, 22: 52−59.
  231. Hoshiga M., Alpers C.E., Smith L.L., et al. ауРз integrin expression in normal and atherosclerotic artery // Circ. Res., 1995, 77: 1129−1135.
  232. Houssiau F., Coulie P.G., Olive D., Van Snick J. Synergic activation of human T cells by interleukin 1 and interleukin 6 // Eur. J. Immunol., 1988, 653−656.
  233. Houssiau F., Devogelaer J.-P., Van Damme J., et al. Interleukin 6 in synovial fluid and serum of patients with rheumatoid arthritis and other inflammatory arthritides // Arthr. Rheumathol., 1988,31: 784−788.
  234. Houssiau F.H., Bukasa K., Sindic C.J.M., et al. Elevated levels of the 26K human hybridoma growth factor (interleukin 6) in cerebrospinal fluid of patients with acute infection of the central nervous system // Clin. Exp. Immunol., 1988,71: 320−323.
  235. Howard M., O’Garra A. Biological properties of interleukin 10 // Immunol. Today, 1992,13: 198−200.
  236. Hsu D.-H., de Waal Malefyt R., Fiorentino D.F., et al. Expression of IL-10 activity by Epstein-Barr Virus Protein BCRFI // Science, 1990,250: 830−832.
  237. Hsu R.C., Kanofsky J.R., Yachnin S. The formation of echonocytes by the insertion of oxygenated sterol compounds into red cell membranes // Blood, 1980, 56: 109−117.
  238. Hsu-Lin S.C., Berman C.L., Furie B.C., et al. A platelet membrane protein expressed during platelet activation and secretion. Studies using a monoclonal antibody specific for thrombin-activated platelets // J. Biol. Chem., 1984, 259: 9121−9126.
  239. Hultner L., Szots H., Welle M., et al. Mouse bone marrow-derived interleukin-3-dependent mast cells and autonomous sublines produce interleukin-6 // J. Immunol., 1989, 67: 408−413.
  240. Jaattela M. Biologic activities and mechanism of action of tumor necrosis factor-a/cachectin // Lab. Invest., 1991, 64: 724−742.
  241. Jacobsen H., Mestan J., Mittnacht S., Dieffenbach C.W. Beta interferon subtype 1 induction by tumor necrosis factor // Mol. Cell. Biol., 1989, 9: 3037.
  242. Jain-Vora S., LeVine A.M., Chroneos Z., et al. Interleukin-4 enhances pulmonary clearance of Pseudomonas aeruginosa//Infect. Immun., 1998, 66: 4229−4236.
  243. Jobling S. A, Auron P.E., Gurka G., et al. Biological activity and receptor binding of human prointerleukin-lp and subpeptides // J. Biol. Chem., 1988, 263: 16 372.
  244. Johnson D.C., Frame M.C., Ligas M.W., et al. HSV IgG Fc receptor activity depends on a complex of two viral glycoproteins gE and gl // J. Virol., 1988, 62: 13 471 354.
  245. Johnson D.C., Ligas M.W. Herpes simplex viruses lacking glycoprotein D are unable to inhibit virus penetration: Quantitative evidence for virus-specific cell surface receptors // J. Virol., 1988, 62: 4605−4612.
  246. Johnson D.R., Pober J.S. Tumor necrosis factor and immune interferon synergistically increase transcription of HLA class I heavy- and light-chain genes in vascular endothelium // Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1990, 87: 5183.
  247. Johnson H.M., Russels J.K., Torres B.A. Second messenger role of arachidonic acid and its metabolites in interferon-gamma production // J. Immunol., 1986, 137: 30 533 056.
  248. Johnson H.M., Torres B.A. Leukotrienes: positive signals for regulation of gamma-interferon production // J. Immunol., 1984, 132: 413−416.
  249. Johnson K.P., Panitch H.S. Effects of experimental recombinant interferons on multiple sclerosis//Trans. Am. Clin. Clim. Assoc., 1988, 100: 171−176.
  250. Johnson R.E., Nahmias A.J., Magder L.S., et al. A seroepidemiologic survey of the prevalence of herpes simplex virus type 2 infection in the United States // N. Engl. J. Med., 1986,321:7−12.
  251. Johnson-Tidey R.R., McGregor J.L., Taylor P.R., Poston R.N. Increase in the adhesion molecule P-selectin in endothelium overlying atherosclerotic plaques. Coexpression with intercellular adhesion molecule-1 // Amer. J. Pathol., 1994, 144: 952 961.
  252. Jones K., Rivera C., Sgadari C., et al. Infection of human endothelial cells with Epstein-Barr virus//J. Exp. Med., 1995,182: 1213−1221.
  253. Jongkind J.F., Visser P., Verkrek A. Cell fusion in space: Plasma membrane fusion in human fibroblasts during short term microgravity // Adv. Space Res., 1996, 17: (6/7)21
  254. Joris I., Zand Т., Nunnary J.L., et al. Studies of the pathogenesis of atherosclerosis. I. Adhesion and emigration of mononuclear cells in the aorta of hypercholesterolemic rats // Amer. J. Pathol., 1983, 113: 341−358.
  255. Juliano R.L., Haskill S. Signal transduction from extracellular matrix // J. Cell Biol., 1993, 120: 577−585.
  256. Jung T.M., Gallatin W.M., Weissman I.L., Dailey M.O. Down-regulation of homing receptors after T cell activation // J. Immunol., 1988, 141:4110−4117.
  257. Kandutch A.A., Chen J.W. Consequences of blocked sterol synthesis in cultured cells on DNA synthesis and membrane composition // J. Biol. Chem., 1977, 252: 409−415.
  258. Kaner R.J., Baird A., Mansukhani A., et al. Fibroblast growth factor receptor is a portal of cellular entry for herpes simplex virus type I // Science, 1990, 248: 1410−1413.
  259. Kanzaki Т., Olofsson A., Moren A., et al. TGF-P 1 binding protein: a component of the large latent complex of TGF-P 1, with multiple repeat sequences // Cell, 1990, 61: 1051−1061.
  260. Kasahara Т., Hooks J.J., Dougherty S.F., Oppenheim J.J. Interleukin 2-mediated immune interferon (IFN-gamma) production by human T cells and T cell subsets // J. Immunol., 1983,130: 1784−1789.
  261. Kasid A., Director E.P., Stovroff M.C., et al. Cytokine regulation of tumor necrosis factor-a and ~p (lymphotoxin) -messenger RNA expression in human peripheral blood mononuclear cells // Cancer Res., 1990, 50: 5072.
  262. Katz Y., Strunk R.C. IL-1 and tumor necrosis factor. Similarities and differences in stimulation of expression of alternative pathway of complement and IFN-P2/IL-6 genes in human fibroblasts//J. Immunol., 1989, 142: 3862.
  263. Kavanaugh W.M., Harsh G.R., Starksen N.F., et al. Transcriptional regulation of the A and В chains of platelet-derived growth factor in microvascular endothelial cells // J. Biol. Chem., 1988,263: 8470−8472.
  264. Kawano M., Hirano Т., Matsuda Т., et al. Autocrine generation and requirement of BSF-2/IL-6 for human multiple myelomas // Nature, 1988, 332: 83−85.
  265. Kishimoto Т., Hirano Т., Molecular regulation of В lymphocyte response // Ann. Rev. Immunol., 1988, 6: 485−512.
  266. Kishimoto Т.К., Julita M.A., Berg E.L., Butcher E.C. Neutrophil MAC-1 and MEL-14 adhesion proteins inversely regulated by chemotactic factors // Science, 1989, 245: 1238−1241.
  267. Kishimoto Т.К., Warnock R.A., Julita M.A., et al. Antibodies against human neutrophil LECAM-1 (LAM-1 /LEU-8/DREG-56 antigen) and endothelial cell ELAM-1inhibit a common CD 18-independent adhesion pathway in vitro // Blood, 1991, 78: 805 811.
  268. Kita H., Horie S., Gliech G.J. Extracellular matrix proteins attenuate activation and degranulation of stimulated eosinophils//J. Immunol., 1996, 156: 1174−1181.
  269. Klebanoff S.J., Vadas M.A., Harlan J.M., et al. Stimulation of neutrophils by tumor necrosis factor//J. Immunol., 1986, 136: 4420.
  270. Kobayachi Y., Appella E., Yamada M., et al. Phosphorylation of intracellular precursor of human IL-1 // J. Immunol., 1988, 140: 2279−2287.
  271. Kobayachi Y., Yamamoto K., Saido Т., et al. Identification of calcium-activated neutral protease as a processing enzyme of human interleukin 1 alpha // Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1990, 87: 5548−5552.
  272. Koh G.Y., Kim S.J., Klug M.G., et al. Targeted expression of transforming growth factor-(31 in intracardiac grafts promotes vascular endothelial cell DNA synthesis // J. Clin. Invest., 1995,95: 114−121.
  273. Kohase S., May L.T., Tamm I., et al. A cytokine network in human diploid fibroblasts: Interaction of 3-interferons, tumor necrosis factor, platelet-derived growth factor, and interleukin-1 //Mol. Cell. Biol., 1987,7: 273−280.
  274. Koike K., Nakahata Т., Takagi M., et al. Synergism of BSF-2/interleukin 6 and interleukin 3 on development of multipotential hemopoietic progenitors in serum-free culture // J. Exp. Med., 1988, 168: 879−890.
  275. Koj A. Definition and classification of acute phase proteins in the acute phase response to injury and infection // Gordon A.H., Koj A., Amsterdam, Elsevier, 1985, 10: 139−232.
  276. Koochekpoor S., Merzak A., Pilkington G.J. Vascular endothelial growth factor production in stimulated by gangliosides and TGF-P isoforms in human glioma cells in vitro//Cancer Lett., 1996, 102: 209−215.
  277. Kraling B.M., Razom M.J., Boom L.M., et al. E-Selectin is present in proliferating endothelial cells in human hemangiomas // Amer. J. Pathol., 1996, 148: 1181−1191.
  278. Krupinski J., Kumar P., Kumar S., Kaluza J. Increased expression of TGF-beta 1 in brain tissue after ischemic stroke in humans // Stroke, 1996,27: 852−857.
  279. Kruth H.S. Filipin-positive, oil red О negative particles in atherosclerotic lesions induced by cholesterol feeding // Lab. Invest., 1984, 50: 87−98.
  280. Kuijpers T.W., Hoogerwerf M., van der Laan L.J.V., et al. CD66 nonspecific cross-reacting antigens are involved in neutrophil adherence to cytokine-activated endothelial cells //J. Cell Biol., 1992, 118: 457−466.
  281. Kunisada Т., Kawai A., Namba M. Effects of simulated microgravity on human osteoblast-like cells in culture // Acta Med. Okayama, 1997, 51: 135−140.
  282. Kurt-Jones E.A., Beller D.I., Mizel S.B., et al. Identification of a membrane-associated interleukin-1 in macrophages // Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1985, 82: 12 041 208.
  283. Maciag Т., Cerundolo J., Usley S., et al. An endothelial cell growth factor from bovine hypothalamus: identification and partial characterization // Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1979, 76: 5674−5676.
  284. Maciag Т., Hoover G.A., Stemerman M.B., Weinstein R. Serial propagation of human endothelial cells in vitro // J. Cell Biol., 1981,91: 420−426.
  285. Madri J.A., Pratt B.M., Tucker A.M. Phenotypic modulation of endothelial cells by transforming growth factor-p depends on the composition and organization of the extracellular matrix // J. Cell Biol., 1988,106,1357−1384.
  286. Madri J.A., Reidy M.A., Kocher O., Bell L. Endothelial cell behavior after denudation injury is modulated by transforming growth factor-P 1 and fibronectin // Lab. Invest., 1989, 60: 755−765.
  287. Majeski M.W., Reidy M.A., Bowen-Pope D.F., et al. PDGF ligands and receptor gene expression during repair of arterial injury // J. Cell Biol., 1990, 111: 2149−2158.
  288. Majesky M.W., Lindner V., Twardzik D.R., et al. Production of transforming growth factor Pi during repair of arterial injury // J. Clin. Invest., 1991, 88: 904−910.
  289. Majno G., Joris I., Zand T. Atherosclerosis: new horizons // Hum. Pathol., 1985, 16: 3−5.
  290. Mannel D.N., Moore R.N., Mergenhager S.E. Macrophages as a major source of tumoricidal activity (tumor necrosis factor) // Infect. Immunol., 1980, 30: 523.
  291. Manning A.M., Kukielka G.L., Dore M., et al. Regulation of GMP-140 mRNA in a canine model of inflammation // FASEB J., 1992, 6: A1060.
  292. Mansfield P.J., Suchard S.J. Thrombospondin promotes both chemotaxis and haptotaxis in neutrophil-like HL-60 cells//J. Immunol., 1993,150: 1959−1970.
  293. Mantovani A., Dejana E. Cytokines as communication signals between leukocytes and endothelial cells // Immunol. Today, 1989, 10: 370−375.
  294. Marlor C.W., Webb D.L., Bombara M.P., et al. Expression of vascular cell adhesion molecule-1 in fibroblast-like synoviocytes after stimulation with tumor necrosis factor //Amer. J. Pathol. 1992,140: 1055−1060.
  295. Matthews N. Production of an anti-tumor cytotoxin by human monocytes // Immunology, 1981,44: 135.
  296. McCartney-Francis N., Mizel D., Wong H., et al. TGF-P regulates production of growth factors and TGF-P by human peripheral blood monocytes // Growth Factors, 1990, 4: 27−35.
  297. McEver R.P., Beckstead J.H., Moore K.L., et al. GMP-140, a platelet a/pha-granule membrane protein, is also synthesized by vascular endothelial cells and is localized in Weibel-Palade bodies // J. Clin. Invest., 1989, 84: 92−99.
  298. McGill H.C. The geographic pethology of atherosclerosis // Baltimore, Wavely Press, 1968, pp. 126−133.
  299. McGovern V.J. Reaction to injury of vascular endothelium with special reference to the problem of thrombosis // J. Pathol. Bacterid., 1955, 69: 283−293.
  300. McKenzie D. Alloantigen presentation by В cells. Requirement for IL-1 and IL-6 // J. Immunol., 1988, 141: 2907−2911.
  301. Melnick J.L., Adam E., Debakey M.E. Cytomegalovirus and atherosclerosis // Eur. Heart J., 1993,14: 30−38.
  302. Melnick J.L., Adam E., DeBakey M.E. Possible role of cytomegalovirus in atherogenesis//J. Amer. Med. Ass., 1990,263: 2207−2207.
  303. Merwin J.R., Anderson J.M., Cocher O., et al. Transforming growth factor-pi modulates extracellular matrix organization and cell-cell junctional complex formation during in vitro angiogenesis // J. Cell Physiol., 1990,142: 117−128.
  304. Miller A.C., Schattenberg D.C., Malkinson A.M., et al. Decreased content of the IL-1 a processing enzyme calpain in murine bone marrow-derived macrophages after treatment with the benzene metabolite hydroquinone // Tox. Lett., 1994, 74: 177−184.
  305. Mills T.T., Machler M.F., Adamany A.M. Effects of 25-hydroxycholesterol on deposition and turnover of membrane components in cultured aortic smooth muscle cells // Fed. Proc., 1980,39:2177.
  306. Ming W.J., Bersan L., Mantovani T. Tumor necrosis factor is chemotactic for monocytes and polymorphonuclear leukocytes // J. Immunol., 1987, 138: 1469. ,
  307. Minick C.R., Fabricant C.G., Fabricant J., Litrenta M.M. Atheroarteriosclerosis induced by infection with a herpesvirus // Amer. J. Pathol., 1979, 96: 673−706.
  308. Minti A., Chalon P., Derocq J.-M., et al. Interleukin-13 is a new human lymphokine regulating inflammatory and immune responses // Nature, 1993, 362: 248−250.
  309. Miyake К., Medina К., Ishihara К., et al. A VCAM-like adhesion molecule on murine bone marrow stromal cells mediated binding of lymphocyte precursors in culture // J. Cell Biol., 1991,114: 557−565.
  310. Miyasono K., Ichijo H., Heldin C.H. Transforming growth factor-P: latent forms, binding proteins and receptors // Growth Factors, 1993, 8: 11−22.
  311. Miyazono K., Heldin C.H. Role for carbohydrate structures in TGF-P latency // Nature (Lond.), 1989, 338: 158−160.
  312. Miyazono K., Hellman U., Wernstedt C., Heldin C.H. Latent high molecular weight complex of transforming growth factor pi: purification from human platelets and structural characterization // J. Biol. Chem., 1988, 263: 6407−6415.
  313. Moore K.W., O’Garra A., de Waal Malefyt W., et al. Interleukin-10 // Annu. Rev. Immunol., 1993, 11: 165−190.
  314. Mosmann T.R., Cherwinski H., Bond M.V., et al. Two types of murine helper T-cell clone: I. Definition accordfing to profiles of lymphokine activities and secreted proteins // J. Immunol., 1986, 136: 2348−2357.
  315. Moyer C.F., Sajuthi D., Tulli H., Williams J.K. Synthesis of IL-1 alpha and IL-1 beta by arterial cells in atherosclerosis // Amer. J. Pathol., 1991,138: 951−960.
  316. Mueller S.N., Rosen E.M., Levine E.M. Cellular senescence in a cloned strain of bovine fetal aortic endothelial cells // Science, 1980,207: 889−891.
  317. Muggeridge M.I., Isola V.J., Bym R.A., et al. Antigenic analysis of a major neutralization site of herpes simplex virus glycoprotein D using deletion mutants and monoclonal antibody-resistant mutants // J. Virol., 1988,62: 3274−3280.
  318. Muller G., Behrens J., Nussbaumer U., et al. Inhibitory action of transforming growth factor p on endothelial cells // Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1987, 84: 5600−5604.
  319. Muller W.A., Berman M.E., Newman P.J., et al. A heterophilic adhesion mechanism for platelet/endothelium cell adhesion molecule-1 (CD31) // J. Exp. Med., 1992, 175: 1401−1404.
  320. Muller W.A., Ratti C.M., McDonnell S.L., Cohn Z.A. A human endothelial cell restricted, externally disposed plasmalemmal protein enriched in intercellular junctions // J. Exp. Med., 1989,170: 399−414.
  321. Muller W.A., Weigl S.A., Deng X., Phillips D.M. PECAM-1 is required for transendothelial migration of leukocytes //J. Exp. Med., 1993, 178:449−460.
  322. Munakata Т., Semba U., Shibuya Y., et al. Induction of interferon-gamma production by human natural killer cells stimulated by hydrogen peroxide // J. Immunol., 1985, 134: 2449−2455.
  323. Munker R., Gasson J., Ogawa M., Koeffler H.P. Recombinant human TNF induces production of granulocyte-monocyte colony-stimulating factor // Nature (Lond.), 1986, 323: 79.
  324. Munro J.M., Cotran R.S. The pathogenesis of atherosclerosis: Atherogenesis and inflammation // Lab. Invest., 1988,58: 249−261.
  325. Munro J.M., Pober J.S., Cotran R.S. Tumor necrosis factor and interferon gamma induce distinct patterns of endothelial activation and associated leukocyte accumulation in skin of papio anubis // Amer. J. Pathol., 1989,135: 121−131.
  326. Myerson D., Hackman R.C., Nelson J.A., et al. Widespread presence of histologically occult cytomegalovirus // Hum. Pathol., 1984, 15: 430−439.
  327. Nabel E.G., Shum L., Pompili V.J., et al. Direct transfer of transforming growth factor-Pi gene into arteries stimulates fibrocellular hyperplasia // Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1993, 90: 10 759−10 763.
  328. Naber E.C., Buffert M.D. Cholesterol oxidation products in fresh and heat-treated egg yolk lipids // Fed. Proc., 1982,41: 531.
  329. Nahmias A., Josey K. Epidemiology of herpes simplex virus 1 and 2. Viral infections of humans // In: «Epidemiology and control» (A.S.Evans, Ed.), New York, Plenum Medical Book Co., 1978, pp. 253−271.
  330. Nakajima K., Martinez-Maza O., Hirano Т., et al. Induction of IL-6/B cell stimulatory factor-2/IFN-p2 production by HIV//J. Immunol., 1989, 142: 531−536.
  331. Nash P.V., Bour B.A., Mastro A.M. Effect of hindlimb suspension simulation of microgravity on in vitro immunological responses // Exp. Cell Res., 1991, 195: 353−360.
  332. Nawroth P.P., Bank I., Handley D., et al. Tumor necrosis factor/cachectin interacts with endothelial cell receptors to induce release of interleukin 1 // J. Exp. Med., 1986, 163: 1363.
  333. Nawroth P.P., Stern D.M. Modulation of endothelial cell hemostatic properties by tumor necrosis factor// J. Exp. Med., 1986,163: 740
  334. Nedwin G.E., Svedersky L.P., Bringman T.S., et al. Effect of interleukin 2, interferon-gamma, and mitogenes on the production of tumor necrosis factors alpha and beta//J. Immunol., 1985, 135: 2492−2497.
  335. Nelson J.A., Reynolds-Kohler C., Oldstone M.B., Siley C.A. HIV and HCMV coinfect brain cells in patients with AIDS // Virology, 1988,165: 280−290.
  336. Newman P.J., Albeda S.M. Cellular and molecular aspects of PECAM-1 // Nouv. Rev. Fr. Hematol., 1992, 34: S7-S11.
  337. Newton L.K., Yung W.K.A., Pettigrew L.C., Steck P.A. Growth regulatory activities of endothelial cell extracellular matrix: mediation by transforming growth factor-P // Exp. Cell Res., 1990, 190: 127−132.
  338. Nikol S., Isner J.M., Pickering J.G., et al. Expression of transforming growth factor-P 1 is increased in human vascular restenosis lesions // J. Clin. Invest., 1992, 90: 1582−1592.
  339. Nortamo P., Li R., Renkonen R., et al. The expression of human intercellular adhesion molecule-2 is refractory to inflammatory cytokines // Eur. J. Immunol., 1991, 21: 2629−2632.
  340. O’Brien K.D., Allen M.D., McDonald Т.О., et al. Vascular cell adhesion molecule-1 is expressed in human coronary atherosclerotic plaques. Implication for the mode of progression of advanced coronary atherosclerosis // J. Clin. Invest., 1993,92: 945−951.
  341. O’Brien E.R., Garvin M.R., Stewart D.K., et al. Osteopontin is synthesized by macrophage, smooth muscle, and endothelial cells in primary and restenotic human coronary atherosclerotic plaques //Arterioscler. Thromb., 1994, 14: 1648−1656.
  342. Okada M., Kitahara M., Kishimoto S., et al. IL-6/BSF-2 functions as a killer helper factor in the in vitro induction of cytotoxic T cells // J. Immunol., 1988,141: 1543−1549.
  343. Oldstone M.B.A. Molecular anatomy of viral persistence // J. Virol., 1991, 65: 6381−6386.
  344. Opal S.M. Interleukin receptor antagonist in sepsis // In: Therapeutic modulation of the cytokines, London, UK, CRC Press, 1996,196−219.
  345. Oppenheimer-Marks N., Davis L.S., Tompkins Bogue D., et al. Differential utilization of ICAM-1 and VCAM-1 during the adhesion and transendothelial migration of human T-lymphocytes // J. Immunol., 1991,147:2913−2921.
  346. Osborn L., Hession C., Tizard R., et al. Direct expression cloning of vascular cell adhesion molecule 1, a cytokine-induced endothelial protein that binds to lymphocytes // Cell, 1989,59: 1203−1211.
  347. Osborn L., Kunkel S., Nabel G.L. Tumor necrosis factor a and interleukin 1 stimulate human immunodeficiency virus enhancer by activation of the nuclear factor кВ // Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1989, 86: 2336.
  348. Pace J.L., Russell S.W., LeBlanc P., Murasko D.M. Comparative effects of various classes of mouse interferons on macrophage activation for tumor cell killing // J. Immunol., 1985, 134: 977−981.
  349. Para M.F., Baucke R.B., Spear P.G. Glycoprotein gE of herpes simplex virus type 1: Effects of anti-gE on virion infectivity and on virus-induced Fc-binding receptors // J. Virol., 1982,41: 129−136.
  350. Patel K.D., Lorant E., Jones D.A., et al. Juxtacrine interaction of endothelial cells with leukocytes: tethering and signaling molecules // Behring. Inst. Mitt., 1993, 92: 144 164.
  351. Patel K.D., Zimmerman G.A., Prescott S.M., et al. Oxygen radicals induce human endothelial cells to express GMP-140 and bind neutrophils // J. Cell Biol., 1991, 112: 749 759.
  352. Paterson J., Cottral G.E. Experimental coronary sclerosis. Ill: Lymphomatosis as a cause of coronary sclerosis in chickens // Arch. Pathol., 1950,49: 699.
  353. Paul W.E. Interleukin-4: a prototypic immunoregulatoryn lymphokine // Blood, 1991,77: 1859−1870.
  354. Paya C.V., Hermans P.E., Wiesner R.H., et al. Cytomegalovirus hepatitis in liver transplantation: prospective analysis of 93 consecutive orthotopic liver transplantations // J. Infect. Dis., 1989,160: 752−758.
  355. Peng S.K., Hill J.C., Morin B.J., Safarick J. Electron microscopic cytochemistry of membrane bound enzymes of cultured aortic cells treated with cholesterol oxidation derivatives // Proc. Electr. Microsc. Soc. Amer., 1984,42: 714−715.
  356. Peng S.K., Morin R.J., Tham P., Taylor C.B. Effects of oxygenated derivatives of cholesterol on cholesterol uptake by cultured aortic smooth muscle cells // Artery, 1984, 13:144−164.
  357. Peng S.K., Taylor C.B. Cholesterol autoxidation, health and atherosclerosis // Wld. Rev. Nutr. Diet., 1984,44: 117−154.
  358. Peng S.K., Taylor C.B., Tham P., Miccelson B. Effect of autoxidant products from USP grade cholesterol on aortic smooth muscle cells. An in vitro study // Arch. Pathol. Lab. Med., 1978,102: 57−61.
  359. Peng S.K., Tham P., Taylor C.B., Miccelson B. Cytotoxic effects of oxidation derivatives of cholesterol on cultured aortic smooth muscle cells and their effect on cholesterol biosynthesis // Amer. J. Clin. Nutr., 1979,32: 1033−1042.
  360. Peng S.K., Tham P., Taylor C.B., Miccelson B. Inhibition of cholesterol uptake by its autoxidation derivatives in cultured aortic smooth muscle cells // Fed. Proc., 1979, 38: 12 234.
  361. Pennica D., Nedwin G.E., Hayflick J.S., et al. Human tumor necrosis factor: precursor structure, expression and homology to lymphotoxin // Nature (Lond.), 1984, 312: 724.
  362. Pepper M.S. Transforming growth factor-beta: vasculogenesis, angiogenesis, and vessel wall integrity // Cytokine & Growth Factor Rev., 1997, 8: 21−43.
  363. Pepper M.S., Belin D., Montesano R., et al. Transforming growth factor beta-1 modulates basic fibroblast growth factor-induced proteolytic and angiogenic properties of endothelial cells in vitro //J. Cell Biol., 1990, 111: 743−755.
  364. Pestka S., Langer J.A., Zoon K.C., Samuel C.E. Interferons and their actions // Annu. Rev. Biochem., 1987, 56: 727−777.
  365. Peterson P.K., Balfour H.H. Jr., Marker S.C., et al. Cytomegalovirus disease in renal allograft recipients: a prospective study of the clinical features, risk factors and impact on renal transplantation // Medicine, 1980, 59: 283−300.
  366. Petrovaara L., Kaipainen A., Mustonen Т., et al. Vascular endothelial growth factor is induced in response to transforming growth factor TGF-P in fibroblastic and endothelial cells // J. Biol. Chem., 1994, 269: 6271−6274.
  367. Philips G.D., Whitehead R.A., Knighton D.R. Inhibition by methylprednisolone acetate suggests an indirect mechanism for TGF-P induced angiogenesis // Growth Factors, 1992,6: 77−84.
  368. Philips G.D., Whitehead R.A., Stone A.M., et al. Transforming growth factor beta (TGF-P) stimulation of angiogenesis: an electron microscopic study // J. Submicrosc. Cytol. Pathol., 1993,25: 149−155.
  369. Picker L.J., Butcher E.C. Physiological and molecular mechanisms of lymphocyte homing // Annu. Rev Immunol., 1992, 10: 561−591.
  370. Picker L.J., Kishimoto Т.К., Smith C.W., et al. ELAM-1 is an adhesion molecule for skin-homing T cells //Nature, 1991,349: 796−799.
  371. Picker L.J., Warnock R.A., Burns A.R., et al. The neutrophil selectin LECAM-1 presents carbohydrate ligands to the vascular selectins ELAM-1 and GMP-140 // Cell, 1991,66: 921−933.
  372. Pierce G.F., Mustoe T.A., Lingelbach J., et al. Platelet-derived growth factor and transforming growth factor-p enhance tissue repair activity by unique mechanisms // J. Cell Biol., 1989,109:429−440.
  373. Pierce G.F., Tarpley J.E., Yanaguhara D., et al. Platelet-derived growth factor (BB homodimer), transforming growth factor pi, and basic fibroblast growth factor in dermal wound healing // Amer. J. Pathol., 1992, 140: 1375−1388.
  374. Plaut M., Piercs J.H., Watson C.J., et al. Mast cell lines produce lymphokines in response to cross-link-age of FeRI or to calcium ionophores // Nature, 1989, 339: 64−67.
  375. Pober J.S., Cotran R.S. The role of endothelial cells in inflammation // Transplantation, 1990, 50: 537−544.
  376. Pober J.S., Gimbrone M.A.Jr., Lapierre L.A., et al. Overlapping patterns of activation of human endothelial cells by interleukin 1, tumor necrosis factor and immune interferon//J. Immunol., 1986,137: 1893−1896.
  377. Pober J.S., Slowik M.R., De Luca L.G., Ritchie A.J. // J. Immunol., 1993, 150: 114−5123.
  378. Poli G., Kinter A., Justement J.S., et al. Tumor necrosis factor a functions in an autocrine manner in the induction of human immunodeficiency virus expression // Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1990, 87: 782.
  379. Poston R.N., Haskard D.O., Coucher J.R., Gall N.P., Johnson-Tidey R.R. Expression of intercellular adhesion molecule-1 in atherosclerotic plaque // Amer. J. Pathol., 1992,140: 665−673.
  380. Praloran V. Structure, biosynthesis and biological roles of monocyte-macrophage colony-stimulating factor (CSF-1 or M-CSF) // Nouv. Rev. Fr. Hematol., 1991, 33: 323 333.
  381. Prescott S.M., Zimmerman G.A., Mclntyre T.M. Human endothelial cells in culture produce platelet-activating factor (l-alkyl-2-acetyl-sn-glycero-3-phosphocholine) when stimulated with thrombin // Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1984, 81: 3534−3538.
  382. Purchio A.F., Cooper J.A., Brunner A.M., et al. Identification of mannose-6-phosphate in two asparagine-1 inked sugar chains of recombinant transforming growth factor pi precursor// J. Biol. Chem., 1988,264: 14 211−14 215.
  383. Raines E.W., Dower S.K., Ross R. IL-1 mitogenic activity for fibroblasts and smooth muscle cells is due to PDGF-AA // Science, 1989,243: 393−396.
  384. Rajavashisth T.B., Andalibi A., Territo M.C., et al. Induction of endothelial cell expression of granulocyte and macrophage colony-stimulating factors by modified low-density lipoproteins // Nature, 1990, 344: 254−257.
  385. Ralph P., Nakoinz I., Sanpson-Johannes A., et al. IL-10, T lymphocyte inhibitor of human blood cell production of IL-1 and tumor necrosis factor // J. Immunol., 1992, 148: 808−814.
  386. Ralph P., Sampson-Johannes A. Macrophage growth and stimulating factor, M-CSF // Prog. Clin. Biol. Res., 1990, 338: 43−63.
  387. Ramsey P.G., Rubin R.H., Tolkoff-Rubin N.E., et al. The renal transplant patients with fever and pulmonary infiltrates: etiology, clinical manifestations, and management // Medicine, 1980, 59: 206−222.
  388. RayChaudhury A., Frazier W.A., D’Amore P.A. Comparison of normal and tumorigenic endothelial cells: differences in thrombospondin production and responses to transforming growth factor-beta // J. Cell. Sci., 1994, 107: 39−46.
  389. Reibman J., Meixler S., Lee T.C., et al. Transforming growth factor pi, a potent chemoattractant for human neutrophils, bypasses classic signal-transduction pathways // Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1991, 88: 6805−6809.
  390. Reidy M.A., Bowyer D.E. Distortion of endothelial repair: the effect of hypercholesterolemia on regeneration of aortic endothelium following injury by endotoxin. A scanning electron microscope study // Atherosclerosis, 1978, 29: 459−466.
  391. Reidy M.A., Bowyer D.E. Scanning electron microscopy: morphology of aortic endothelium following injury by endotoxin and during subsequent repair // Atherosclerosis, 1977, 26: 319−328.
  392. Reidy M.A., Schwartz S.M. Endothelial injury and regeneration. IV. A nondenuding injury to aortic endothelium // Lab. Invest., 1983,48: 25−34.
  393. Reidy M.A., Schwartz S.M. Endothelial regeneration. III. Time course of intimal changes after small defined injury to rat aortic endothelium // Lab. Invest., 1981, 44: 301 308.
  394. Reidy M.A., Standaert D.M., Schwartz S.M. Inhibition of endothelial cell regrowth. Cessation of aortic endothelial cell replication after balloon catheter denudation // Arteriosclerosis, 1982, 2: 216−220.
  395. Reis L.F.L., Lee Т.Н., Vilcek J. Tumor necrosis factor acts synergistically with autocrine interferon-P and increases interferon-p mRNA levels in human fibroblasts // J. Biol. Chem., 1989,264: 16 351.
  396. Repin V.S., Dolgov V.V., Zaikina O.E., et al. Heterogeneity of endothelium in human aorta. A quantitative analysis by scanning electron microscopy // Atherosclerosis, 1984,50: 35−52.
  397. Rettenmier C.W., Sherr C.J. The mononuclear phagocyte colony-stimulating factor (CSF-1, M-CSF) //Hematopoietic growth factors. Hematology/oncology clinics of North America, 1989, 3: 479−492.
  398. Rice G.E., Bevilacqua M.P. An inducible endothelial cell surface glycoprotein mediates melanoma adhesion // Science, 1989, 246: 1303−1306.
  399. Rice G.E., Gimbrone M.A.Jr., Bevilacqua M.P. Tumor cell-endothelial interaction. Increased adhesion of human melanoma cells to activated vascular endothelium // Amer. J. Pathol. 1988,133:204−210.
  400. Rice G.E., Munro J.M., Bevilacqua M.P. Inducible cell adhesion molecule 110 (INCAM-110) as an endothelial receptor for lymphocytes. A CD1 l/CD18-independent adhesion mechanism//J. Exp. Med., 1990,171: 1367−1374.
  401. Rice G.E., Munro J.M., Corless C., Bevilacqua M.P. Vascular and nonvascular expression of INCAM-110. A target for mononuclear leukocyte adhesion in normal and inflamed human tissues // Amer. J. Pathol. 1991,138: 385−393.
  402. Richardson M., Hadcock S.J., DeReske M., Cybulsky M.I. Increased expression in vivo of VCAM-1 and E-selectin by the aortic endothelium of normolipidemic and hyperlipidemic diabetic rabbits // Atheroscler. Thromb., 1994,14: 760−769.
  403. Rijken P.J., de Groot R.P., Briegleb W., et al. Epidermal growth factor-induced cell rounding is sensitive to simulated microgravity // Aviat. Space Environ. Med., 1991, 62: 32−36.
  404. Ritchie D.G., Fuller G.M. Hepatocyte-stimulating factor: a monocyte-derived acute-phase regulatory protein // Ann. N.Y. Acad. Sci., 1983,408: 490−500.
  405. Roberts A.B., Sporn M.B., Assoian R.K., et al. Transforming growth factor type P: rapid induction of fibrosis and angiogenesis in vivo and stimulation of collagen formation in vitro // Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1986, 83: 4167−4171.
  406. Robinson D.S., Hamid Q., Ying S., et al. Predominant ТН-2-like bronchoalveolar T-lymphocyte population in atopic asthma // N. Engl. J. Med., 1992, 326: 298−304.
  407. Roilides E., Lyman C.A., Mertins S.D., et al. Ex vivo effects of macrophage colony-stimulating-factor on human monocyte activity against fungal and bacterial pathogens // Cytokine, 1996, 8: 42−48.
  408. Rooney J.F. Epidemiology of herpes simplex, Herpes simplex virus infection: Biology, treatment and prevention //Ann. Intern. Med., 1985, 103: 404−419.
  409. Rosenfeld M.E., Tsukada Т., Gown A.M., Ross R. Fatty streak initiation in Watanabe heritable hyperlipemic and comparably hypercholesterolemic fat-fed rabbits // Arteriosclerosis, 1987, 1: 9−23.
  410. Ross R. Atherosclerosis: A defense mechanism gone awry // Amer. J. Pathol., 1993, 143: 987−1002.
  411. Ross R. Endothelial dysfunction and atherosclerosis // Endothelial cell dysfunction (Simionescu N., Simionescu M., Eds.), Plenum Press, NY, 1992, pp. 295−307.
  412. Ross R. The pathogenesis of atherosclerosis an update // N. Engl. J. Med., 1986, 314: 488−500.
  413. Ross R., Glomset J.A. The pathogenesis of atherosclerosis // N. Engl. J. Med., 1976,295:469−377.
  414. Rouslahti E. Integrins // J. Clin. Invest., 1991, 87: 1−5.
  415. Rubartelli A., Cozzolino F., Talio M., et al. A novel secretory pathway for interleukin-1 beta, a protein lacking a signal sequence // EMBO J., 1990,9: 1503−1510.
  416. Rubbia-Brandt L., Sappino A.P., Gabbiani G. Locally applied GM-CSF induces the accumulation of a-smooth muscle actin containing myofibroblasts // Virchows Arch. B. Cell Pathol., 1991,60:73−82.
  417. Ryan D.H., Nuccie B.L., Abboud C.N., Winslow J.M. Vascular cell adhesion molecule-1 and the integrin VLA-4 mediate adhesion of human В cell precursors to cultured bone marrow adherent cells // J. Clin. Invest., 1991, 88: 995−1004.
  418. Saksela O., Moscatelli D., Rifkin D.B. The opposing effects of basic fibroblast growth factor and transforming growth factor beta on the regulation of plasminogen activator activity in capillary endothelial cells // J. Cell Biol., 1987, 105: 957−963.
  419. Salgame P., Abrams J.S., Clayberger C., et al. Differing lymphokine profiles of functional subsets of human CD4 and CD8 T cell clones // Science, 1991,254: 279−282.
  420. Sanceau J., Beranger F., Gaudelet C., Wietzerbin J. IFN-y is an essential cosignal for triggering IFN-P2/BSF-2 gene expression in human monocytic cell lines // Ann. N.Y. Acad. Sci., 1989, 557: 130−143.
  421. Sanders W.E., Wilson R.W., Ballantyne C.M., Beaudet A.L. Molecular cloning and analysis of in vivo expression of murine P-selectin // Blood, 1992, 80: 795−800.
  422. Sankar S., Mahooti-Brooks N., Bensen L., et al. Modulation of transforming growth factor-P receptor levels on endothelial cells during in vitro angiogenesis // J. Clin. Invest., 1996, 97: 1436−1446.
  423. Sanz M.-J., Hartnell A., Chisholm P., et al. Tumor necrosis factor a -induced eosinophil accumulation in rat skin is dependent on a4 integrin/vascular cell adhesion molecule-1 adhesion pathway//Blood, 1997,90: 4144−4152.
  424. Sato Y., Rifkin D.B. Inhibition of endothelial cell movement by pericytes and smooth muscle cells: activation of a latent transforming growth factor-pi-like molecule by plasmin during co-culture // J. Cell Biol., 1989, 109: 309−315.
  425. Satoh Т., Sasatomi E., Yamasaki F. et al. Multinucleated variant endothelial cells (MVECs) of human aorta: expression of tumor suppressor gene p53 and relation to atherosclerosis and aging // Endothelium, 1998, 6: 123−132.
  426. Sawdey M.S., Podor T.J., Loskutoff D.J. Regulation of type 1 plasminogen activator inhibitor gene expression in cultured bovine endothelial cells // J. Biol. Chem., 1989,264: 10 396−10 401.
  427. Scheurich P., Thoma В., Ucer U., Pfizenmaier K. Immunoregulatory activity of recombinant human tumor necrosis factor (TNF)-a: induction of TNF receptors on human T cells and TNF-a mediated enhancement of T cell responses // J. Immunol., 1987, 138: 1786.
  428. Schonbeck U., Brandt E., Petersen F., et al. IL-8 specifically binds to endothelial but not to smooth muscle cells // J. Immunol., 1995,154: 2375−2383.
  429. Schrader J.W., Moyer C., Ziltener H.J., Reinish C.L. Release of cytokines colony-stimulating factor-1, granulocyte-macrophage colony-stimulating factor, and IL-6 by cloned murine vascular smooth muscle cells // J. Immunol., 1991, 146: 3799−3808.
  430. Schreiber R.D., Cedala A. Molecular characterization of interferon gamma as a macrophage activating factor // Lymphokines, 1985,11: 87−118.
  431. Schreuder H., Tardif C., Trump-Kallmeyer S., et al. A new cytokine receptor binding mode revealed by the crystal structure of the IL-1 receptor with an antagonist // Nature, 1997, 386: 194−200.
  432. Schroder J.M., Christophers E. Secretion of novel and homologous neutrophil-activating peptides by LPS-stimuIated human endothelial cells // J. Immunol., 1989, 142: 244−251.
  433. Schroder J.M., Mrowietz U., Christophers E. Purification and partial biologic characterization of a human monocyte-derived peptide with potent neutrophil-stimulating activity//J. Immunol., 1988, 140: 3534.
  434. Schroder J.M., Mrowietz U., Morita E., Christophers E. Purification and partial biochemical characterization of a human monocyte-derived, neutrophil-activating peptide that lacks interleukin-1 activity //J. Immunol., 1987, 139: 3474.
  435. Schultz-Cherry S., Murphy-Ullrich J.E. Thrombospondin causes activation of latent transforming growth factor-P secreted by endothelial cells by a novel mechanism // J. Cell Biol., 1993, 122:923−932.
  436. Schwartz B.R., Wayner E.A., Carlos T.M., et al. Identification of surface protein mediating adherence of CD1 l/CD18-deficient lymphoblastoid cells to cultured human endothelium //J. Clin. Invest., 1990, 85: 2019−2022.
  437. Schwartz C.J., Valente A.J., Sprague E.A., et al. The pathogenesis of atherosclerosis: an overview // Clin. Cardiol., 1991, 14: 1−16.
  438. Schwartz S.M. Cellular proliferation in atherosclerosis and hypertension // Progr. Cardiovasc. Dis., 1984, 26: 356−372.
  439. Schwartz S.M., Benditt E.P. Aortic endothelial cell replication. I. Effect of age and hypertension in the rat // Circ. Res., 1977,41: 248−255.
  440. Schwartz S.M., Benditt E.P. Cell replication in the aortic endothelium: A new method for study of the problem // Lab. Invest., 1973,28: 699−707.
  441. Schwartz S.M., Benditt E.P. Clustering of replicating cells in aortic endothelium // Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1976, 73: 651−653.
  442. Schwenke D.C., Carew Т.Е. Initiation of atherosclerotic lesions in cholesterol-fed rabbits: I. Focal increases in arterial LDL precede development of fatty streak lesion // Arteriosclerosis, 1989a, 9: 895−907.
  443. Schwenke D.C., Carew Т.Е. Initiation of atherosclerotic lesions in cholesterol-fed rabbits: II. Selective retention of LDL ws. selective increase in LDL permeability in susceptible sites of arteries // Arteriosclerosis, 1989b, 9: 908−918.
  444. Scott L.J., Merrilees M.J. Stimulation of smooth muscle cell glycosaminglycan synthesis by cultured endothelial cells is dependent of endothelial cell density // Atherosclerosis, 1987, 63: 145−152.
  445. Scott-Burden T.Y., Vanhoutte P.M. The endothelium as a regulator of vascular smooth muscle proliferation // Cyrculation, 1993, 87: 51−55.
  446. Sedmak D.D., Guglielmo A.M., Knight D.A., et al. Cytomegalovirus inhibits major histocompatibility class II expression on infected endothelial cells // Amer. J. Pathol., 1994,144: 683−692.
  447. Sedmak D.D., Knight D.A., Vook N.A., Waldman W.J. Divergent patterns of ELAM-1, ICAM-1, and VCAM-1 expression on cytomegalovirus-infected endothelial cells//Transplantation, 1994, 58: 1379−1385.
  448. Sedmak D.D., Roberts W.H., Stephens R.E., et al. Inability of cytomegalovirus infection of cultured endothelial cells to induce HLA class II antigen expression // Transplantation, 1990, 49: 458−462.
  449. Segarini P.R., Rosen D.M., Seydin S.M. Binding of transforming growth factor-p to cell surface proteins varies with cell type // Molec. Endocr., 1989,3: 261−272.
  450. Shalaby M.R., Aggarwal B.B., Rinderknecht E., et al. Activation of human polymorphonuclear neutrophil functions by interferon-y and tumor necrosis factors // J. Immunol., 1985, 135: 2069.
  451. Shalaby M.R., Waage A., Espevik T. Cytokine regulation of interleukin 6 production by human endothelial cells // Cell Immunol., 1989, 121: 372−382.
  452. Sherr C.J., Rettenmier C.W., Sacca R., et al. The c-fms proto-oncogen product is related to the receptor for the mononuclear phagocyte growth factor, CSF-1 // Cell, 1985, 41:665−676.
  453. Shimizu Y., Shaw S., Graber N., et al. Activation-independent binding of human memory T cells to adhesion molecule ELAM-1 // Nature, 1991, 349: 799−802.
  454. Shirinsky V.P., Antonov A.S., Birukov K.G., et al. Mechano-chemical control of human endothelium orientation and size // J. Cell Biol., 1989, 109: 331−339.
  455. Short H.D. Cardiovascular effects of microgravity: evolution of understanding // Otolaryngol. Head Neck Surg., 1998,118: S52-S54.
  456. Silberstein D.S., David J.R. Tumor necrosis factor enhances eosinophil toxicity to Schistosoms mansoni larvae // Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1986, 83: 1055.
  457. Sima A., Bulla A., Simionescu N. Experimental obstructive coronary atherosclerosis in the hyperlipidemic hamster // J. Submicrosc. Cytol. Pathol., 1990, 22:116.
  458. Simionescu N., Simionescu M. Proatherosclerotic events: pathobiochemical changes occurring in the arterial wall before monocyte migration // FASEB J., 1993, 7: 1359−1366.
  459. Simionescu N., Vasile E., Lupu F., et al. Prelesional events in atherogenesis: accumulation of extracellular cholesterol-rich liposomes in the intima and cardiac valves of the hyperlipidemic rabbit//Amer. J. Pathol., 1986, 123: 109−125.
  460. Simmons P.J., Masinovsky В., Longenecker B.M., et al. Vascular cell adhesion molecule-1 expressed by bone marrow stromal cells mediates the binding of hematopoietic progenitor cells // Blood, 1992: 388−395.
  461. Sims J.E., Giri J.G., Dower S.K. The two interleukin-1 receptors play different roles in IL-1 activities // Clin. Immunol. Immunopathol., 1994, 72: 9−14.
  462. Slivka S.R., Loskutoff D.J. Platelets stimulates endothelial cells to synthesize type 1 plasminogen activator inhibitor. Evaluation of the role of transforming growth factor p // Blood, 1991,77: 1013−1019.
  463. Smiley M.L., Mar E.C., Huang E.S. Cytomegalovirus infection and viral-induced transformation of human endothelial cells // J. Med. Virol., 1988,25: 213−226.
  464. Smirnov V.N., Antonov A.S., Romanov Yu.A., et al. Effects of forskolin and phorbol-myristate-acetate on cytoskeleton, extracellular matrix and protein phosphorylation in human endothelial cells // J. Mol. Cell. Cardiol., 1989, 21:3−11.
  465. Smirnov V.N., Repin V.S., Tkachuk V.A., Chazov E.I. Vascular endothelium and atherosclerosis a multidisciplinary approach // In: U.S.Ryan (Ed.) Endothelial cells. CRC Press, Boston. 1988, Vol. 3, pp. 139−215.
  466. Smirnov V.N., Repin V.S., Tkachuk V.A., Chazov E.I. Vascular endothelium in atherosclerosis a multidisciplinary approach // In: «Endothelial cells» (U.S.Ryan, Ed.), CRC Press, 1988,3: 139−215.
  467. Smirnov V.N., Repin V.S., Tkachuk V.A., Chazov E.I. Vascular endothelium and atherosclerosis: a multidisciplinary approach // In: U.S.Ryan (Ed.) «Endothelial cells», CRC Press Inc., Boca Raton, Florida. 1988,3: 139−215.
  468. Smith L.L., Mathews W.S., Price J.C., et al. Thin chromatographic examination of cholesterol autoxidation //J. Chromatogr., 1967, 27: 187−205.
  469. Smyth S.S., Joneckis C.C., Parise L.V. Regulation of vascular integrins // Blood., 1993,81:2827−2843.
  470. Soboleva E.L., Popkova V.M., Saburova O.S., et al. Colony forming units and Atherosclerosis // In: Atherosclerosis X, Elsevier Science, 1995, pp. 919−925.
  471. Soboleva E.L., Saburova O.S., Rozhkova T.A., Tvorogova M.G. Stem cells of hemopoietic and stromal differentiation lineages and human Atherosclerosis // Angiol. Vase. Surg., 1999,5 (suppl): 190−203.
  472. Spencer G.D., Shulman H.M., Myerson D., et al. Diffuse intestinal ulceration after marrow transplantation: a clinicopathologic study of 13 patients // Hum. Pathol., 1986, 17: 621−633.
  473. Spertini O., Kansas G.S., Munro J., et al. Regulation of leukocyte migration by activation of leukocyte adhesion molecule-1 (LAM-1) selectin // Nature, 1991, 349: 691 694.
  474. Spertini O., Luscinskas F.W., Gimbrone M.A.Jr., Tedder T.F. Monocyte attachment to activated human vascular endothelium in vitro is mediated by leukocyte adhesion molecule-1 (L-selectin) under nonstatic conditions // J. Exp. Med., 1992, 175: 1789−1792.
  475. Spertini O., Luscinskas F.W., Kansas G.S., et al. Leukocyte adhesion molecule-1 (LAM-1, L-selectin) interacts with an inducible endothelial cell ligand to support leukocyte adhesion // J. Immunol., 1991, 147: 2565−2573.
  476. Springer T.A. Adhesion receptors of the immune system // Nature, 1990, 346: 425 434.
  477. Sprugel K.H., McPherson J.M., Clowes A.W., Ross R. Effects of growth factors in vivo. I. Cell ingrowth into porous subcutaneous chambers // Amer. J. Pathol., 1987, 129: 601−613.
  478. Standiford T.J., Kunkel S.L., Basha M.A., et al. Interleukin-8 gene expression by a pulmonary epithelial cell line // J. Clin. Invest., 1990, 86: 1945.
  479. Stanley E.R., Berg K.J., Einstein D.B., et al. The biology and action of colony-stimulating factor-1 // Stem Cells, 1994,12: 15−25.
  480. Starksen N.F., Harsh G.R., Gibbs V.C., Williams L.T. Regulated expression of the platelet-derived growth factor A chain gene in microvascular endothelial cells // J. Biol. Chem., 1987, 262:14 381−14 384.
  481. Stary H.C. Composition and classification of human atherosclerotic lesions // Virchows Arch. A. Pathol. Anat., 1992,421: 277−290.
  482. Staunton D.E., Dustin M.L., Springer T.A. Functional cloning of ICAM-2, a cell adhesion ligand for LFA-1 homologous to ICAM-1 //Nature, 1989, 339: 61−64.
  483. Stenberg P.E., McEver R.P., Shuman M.A., et al. A platelet a/pha-granule membrane protein (GMP-140) is expressed on the plasma membrane after activation // J. Cell Biol., 1985,101: 880−886.
  484. Stern A.S., Podlaski F.J., Hulmes J.D., et al. Purification to homogeneity and partial characterization of cytotoxic lymphocyte maturation factor from human B-lymphoblastoid cells // Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1990, 87: 6808−6812.
  485. Stevenson F.T., Bursten S.L., Fanton C., et al. The 31-kDa precursor of interleukin-la is myristoylated on specific lisines within the 16-kDa N-terminal propiece // Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1993, 90: 7245−7249.
  486. Stewart W.E. The interferons // 1979, New York, Springer-Verlag.
  487. Stockinger H., Gadd S.J., Eher R., et al. Molecular characterization and functional analysis of the leukocyte surface protein CD31 //J. Immunol., 1990, 145: 3889−3897.
  488. Stoolman L.M., Tenforde T.S., Rosen S.D. Phosphomannosyl receptors may participate in the adhesive interactions between lymphocytes and high endothelial venules //J. Cell Biol., 1984, 99: 1535−1540.
  489. Strieter R.M., Phan S.H., Showell H.J., et al. Monokine-induced neutrophil chemotactic factor gene expression in human fibroblasts // J. Biol. Chem., 1989, 264: 10 621.
  490. Strieter S.M., Kunkel S.L., Showell H.J., et al. Endothelial cell gene expression of a neutrophil chemotactic factor by TNF-a, LPS, and IL-lp // Science, 1989, 243: 14 671 469.
  491. Syners L., Fontaine V., Content J. Modulation of interleukin-6-receptors in human cells // Ann. N.Y. Acad. Sci., 1989, 557: 388−395.
  492. Tabibzadeh S.S., Santhanam U., Sehgal P.B., May L. Cytokine-induced production ofIFN-p2/IL-6 by freshly prepared explanted human endometrial stromal cells. Modulation by estradiol 17−0//J. Immunol., 1989,142: 3134.
  493. Taga K., Tosato G. IL-10 inhibits T cell proliferation and IL-2 production // J. Immunol., 1992,148: 1143−1148.
  494. Taga Т., Kawanishi Y., Hardy R., et al. Receptors for В cell stimulatory factor 2. Quantitation, specificity, distribution and regulation of their expression // J. Exp. Med., 1987,166: 967−981.
  495. Taichman D.B., Cybulsku M.I., Djaffar I., et al. Tumor cell surface a4pi integrin mediates adhesion to vascular endothelium: demonstration of an interaction with the N-terminal domains of INCAM-110/VCAM-l // Cell Reg., 1991,2: 347−355.
  496. Taipale J., Lohi J., Saarinen J., et al. Human mast cell chymase and leukocyte elastase release latent transforming factor-pi from the extracellular matrix of cultured human epithelial and endothelial cells // J. Biol. Chem., 1995,270: 4689−4696.
  497. Tairbekov M.G. The role of signal systems in cell gravisensitivity // Adv. Space Res., 1996, 17: 113−119.
  498. Takai Y., Wong G., Clark S., et al. В cell stimulatory factor-2 is involved in the differentiation of cytotoxic T lymphocytes // J. Immunol., 1988, 140: 508−512.
  499. Takehara К., LeRoy E.C., Grotendorst G.R. TGF-p inhibition of endothelial cell proliferation: alteration of EGF binding and EGF-induced growth-regulatory (competence) gene expression // Cell, 1987, 49, 415−422.
  500. Takeichi M. Cadherin cell adhesion receptors as a morphogenic regulator // Science, 1991,251: 1451−1455.
  501. Tanaka K., Sueishi K. Biology of disease. The coagulation and fibrinolysis systems and atherosclerosis // Lab. Invest., 1993, 69: 5−18.
  502. Taub D.D. Chemokine-leukocyte interaction. The voodoo that they do so well // Cytokine & Growth Factor Rev., 1996, 7: 355−376.
  503. Taylor C.B., Peng S.K., Werthessen N.T., et al. Spontaneously occurring autotoxic derivatives of cholesterol //Amer. J. Clin. Nutr., 1979, 32: 40−57.
  504. Tedder T.F. Cell-surface receptor shedding: A means for regulating functions // Am. J. Respir. Cell Mol. Biol., 1991, 5: 305−306.
  505. Tedder T.F., Steeber D.A., Chen A., Engel P. The selectins: vascular adhesion molecules // FASEB J., 1995, 9: 866−873.
  506. Thomas G.P., Welch W.J., Mathews M.B., Feramisco J.R. Molecular and cellular effects of heat shock and related treatments of mammalian tissue culture cells // Cold Spring Harbor Symp. Quant. Biol., 1982,46: 985−996.
  507. Tokunaga O., Fan J., Watanabe T. Atherosclerosis- and age-related multinucleated variant endothelial cells in primary culture from human aorta // Amer. J. Pathol., 1989, 135: 967−976.
  508. Tokunaga O., Satoh Т., Yamasaki F., Wu L. Multinucleated variant endothelial cells (MVECs) in human aorta: chromosomal aneuploidy and elevated uptake of LDL // Semin Thromb Hemost, 1998, 24: 279−284.
  509. Toorkey C.B., Carrigan D.R. Immunohistochemical detection of an immediate early antigen of human cytomegalovirus in normal tissues // J. Infect. Dis., 1989, 160: 741 751.
  510. Tosato G., Pike S. Interferon-p2/interleukin 6 is a co-stimulant for human T lymphocytes//J. Immunol., 1988,141: 1556−1562.
  511. Trillo A.A., Prichard R.W. Early endothelial changes in experimental primate atherosclerosis//Lab. Invest., 1979,41: 294−302.m
  512. Trinchieri G., Perussia B. Immune interferon: a pleiotropic lymphokine with multiple effects//Immunol. Today, 1985, 6: 131−136.
  513. Tsuji Т., Yamaguchi K., Nakamura T. Molecular cloning of the large subunit of transforming growth factor type p masking protein and expression of the mRNA in various rat tissues // Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1990, 87: 8835−8839.
  514. Tsujimoto M., Yokota S., Vilcek J., Weissmann G. Tumor necrosis factor provokes superoxide anion generation from neutrophils // Biochem. Biophys. Rec. Commun., 1986, 137: 1094.
  515. J.P., Mattila P., Renkonen R. // J. Immunol. 1990. — Vol. 145 — P. 41 924 197.
  516. Ustinov J.A., Loginov R.J., Bruggemen C.A., et al. Cytomegalovirus induces class II expression in rat heart endothelial cells // J. Heart Lung Transplant., 1993,12: 644−651.
  517. Uyttenhove C., Coulie P.G., Van Snick J. T cell growth and differentiation induced by interleukin-HPl/IL-6, the murine hybridoma/plasmacytoma growth factor // J. Exp. Med., 1988, 167:1417−1427.
  518. Valone F.H. Identification of platelet-activating factor receptors in P388D1 murine macrophages//!. Immunol., 1988, 140: 2389−2394.
  519. Van Damme J., Opdenakker G., Simpson R.J., et al. Identification of the human 26 kD protein, interferon p2 (IFN-p2), as, а В cell hybridoma/plasmacytoma growth factor induced by interleukin 1 and tumor necrosis factor // J. Exp. Med., 1987, 165: 914−919.
  520. Van Damme J., Van Beeumen J., Decock В., et al. Separation and comparison of two monokines with LAF activity (interleukin-lp and hybridoma growth factor): identification of leukocyte-derived HGF as interleukin-6 // J. Immunol., 1988, 140: 15 341 541.
  521. Van Damme J., van Beeumen J., Opdenakker G., Billiau A. A novel, NH2-terminal sequence-characterized human monokine possessing neutrophil chemotactic, skin-reactive, and granulocytosis-promoting activity // J. Exp. Med., 1988, 167: 1364.
  522. Van Snick J. Interleukin-6. An overview // Annu. Rev. Immunol., 1990, 8: 253 278.
  523. Vanhoutte P.M., Mombouli J.V. Vascular endothelium: vasoactive mediators // Progr. Cardiovasc. Dis., 1996, 39: 229−238.
  524. Velde A.A., Huijbens R.J.F., de Vries J.E., et al. Interleukin-4 (IL-4) inhibits secretion of IL-ip, tumor necrosis factor a and human IL-6 by human monocytes // Blood, 1990, 76: 1392−1397.
  525. Vieira P., de Waal-Malefyt R., Dang M.-N., et al. Isolation and expression of human cytokine synthesis inhibitory factor (CSIF/IL10) cDNA clones: homology to Epstein-Barr virus open reading frame BCRFI // Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1991, 88: 1172−1176.
  526. Vikhert A.M., Rosinova V.N. On the endothelial lining of human arteries in genesis of atherosclerotic plaque // In: «Vessel wall in athero- and thrombogenesis studies in USSR (Chazov E.I., Smirnov V.N., Eds.), Springer-Verlag, Berlin, 1982, p. 3−13.
  527. Vilcek J., Gray P.W., Rinderknecht E., Sevastopoulos C.G. Interferon gamma: a lymphokine for all seasons // Lymphokines, 1985,11: 1−32.
  528. Vilcek J., Henriksen-DeStefano D., Siegel D., et al. Regulation of IFN-gamma induction in human peripheral blood cells by exogenous and endogenous produced interleukin-2 // J. Immunol., 1985, 135: 1851−1856.
  529. Waage A., Brandtzaeg P., Halstensen A., et al. The complex pattern of cytokines in serum from patients with meningococcal septic shock// J. Exp. Med., 1989, 169: 333−338.
  530. Wahl S.M., Hunt D.A., Wakefield L.A., et al. Transforming growth factor type P induces monocyte chemotaxis and growth factor production // Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1987, 84: 5788−5792.1
  531. Waldman W.J., Knight D.A. Cytokine-mediated induction of endothelial adhesion molecule and histocompatibility leukocyte antigen expression by cytomegal о virus-activated T cells // Amer. J. Pathol., 1996,148: 105−119.
  532. Walker C., Bode E., Boer L., et al. Allergic and nonallergic asthmatics have distinct patterns of T-cell activation and cytokine production in peripheral blood and bronchoalveolar lavage// Am. Rev. Respir. Dis., 1992, 146: 109−115.
  533. Walpola P.L., Gotlieb A.I., Cybulsky M.I., Langille B.L. Expression of ICAM-1 and VCAM-1 and monocyte adherence in arteries exposed to altered shear stress // Arterioscler. Thromb. Vase. Biol., 1995, 15: 2−10.
  534. Walther I., Pippia P., Meloni M.A., et al. Simulated microgravity inhibits the genetic expression of interleukin-2 and its receptor in mitogen-activated T lymphocytes // FEBS Lett., 1998,436: 115−118.
  535. Walz A., Peveri P., Baggiolini M. Purification and amino acid sequencing of NAF, a novel neutrophil-activating factor produced by monocytes // Biochem. Biophys. Rec. Commun., 1987, 149: 755.
  536. Walz A.F., Meloni F., Clark-Lewis I., et al. Ca. changes and respiratory burst in human neutrophils and monocytes induced by NAP-l/interleukin-8, NAP-2 and ^ GRO/MGSA // J. Leukocyte Biol., 1991, 50: 279.
  537. Wang P., Wu P., Seigel M.L., et al., Interleukin (IL)-10 inhibits nuckear factor kB
  538. NF-kB) activation in human monocytes: IL-10 and IL-4 suppres cytokine synthesis bydifferent mechanisms // J. Biol. Chem., 1995: 9558−9563.
  539. Watanabe Т., Tokunaga O. Multinucleated variant endothelial cell. Its !. characteristics and relation to atherosclerosis // Ann. NY Acad. Sci., 1990, 598: 217 222.
  540. Wayner E.A., Garcia-Padro A., Humphries M.J., et al. Identification and characterization of the T-lymphocyte adhesion receptor for an alternative cell attachment domain (CS-1) in plasma fibronectin // J. Cell Biol., 1989, 109: 1321−1330.
  541. Weller A., Isenmann S., Vestweber D. Cloning of the mouse endothelial selectins. Expression of both E- and P-selectin is inducible by tumor necrosis factor // J. Biol. Chem., 1992, 267: 15 176−15 183.
  542. Weller P.F., Rand Т.Н., Goelz S.E., et al. Human eosinophil adherence to vascular endothelium mediated by binding to vascular cell adhesion molecule-1 and endothelial leukocyte adhesion molecule-1 // Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1991, 88: 7430−7433.
  543. Wellicome S.M., Thornhill M.H., Pitzalis C., et al. A monoclonal antibody that detects a novel antigen on endothelial cells that is induced by tumor necrosis factor IL-1, TNF or lipopolysacharide // J. Immunol., 1990,144: 2558−2565.
  544. Whatley R.E., Prescott S.M., Mclntyre T.M., Zimmerman G.A. Endothelium from diverse vascular sources synthesizes platelet-activating factor // Arteriosclerosis, 1988, 8: 321−331.
  545. Wilcox J.N., Smith K.M., Williams L.T., et al. Platelet-derived growth factor mRNA detection in human atherosclerotic plaques by in situ hybridization // J. Clin. Invest., 1988, 82: 1134−1143.
  546. Willems C., Astaldi G.C.B., De Groot P.G., et al. Media conditioned by cultured human vascular endothelial cells inhibit the growth of vascular smooth muscle cells // Exp. Cell Res., 1982, 139: 191−197.
  547. Wilson K.P., Black J.A., Thomson J.A., et al. Structure and mechanism of interleukin-1 p converting enzyme // Nature, 1994, 370: 270−275.
  548. Wing E.J. Recombinant human granulocyte/macrophage colony-stimulating factor enhances monocyte cytotoxicity and secretion of tumor necrosis factor alpha and interferon in cancer patients // Blood, 1989, 73: 643−646.
  549. Wiseman D.M., Polverini P.J., Kamp D.V., Leibowich S.J. Transforming growth factor beta (TGF-P) is chemotactic for human monocytes and induces their expression of angiogenic activity//Вiochem. Biophys. Rec. Commun., 1988, 157: 793 800.
  550. Wissler R.W. Progression and regression of atherosclerotic lesions // Adv. Exp. Med. Biol., 1978,104: 77−109.
  551. Witztum J. L The role of monocytes and oxidized LDL in atherosclerosis // Atherosclerosis Reviews, 1990, 21: 59−69.
  552. Voermans C., Rood P.M.L., Hordijk P.L. et al. Adhesion molecules involved in transendothelial migration of human hematopoietic progenitor cells // Stem Cells, 2000, 18: 435−443.
  553. Whetton A.D., Graham G.J. Homing and mobilization in the stem cell niche // Trends Cell Biol, 1999,9: 233−238.
  554. Wolf S.F., Temple P.A., Kobayachi M., et al. Cloning of cDNA for natural killer cell stimulatory factor, a heterodimeric cytokine with multiple biologic effects on T and natural killer cells//J. Immunol., 1991, 146: 3074−3080.
  555. Wong G.G., Witek-Giannitti J, Temple P., et al. Stimulation of murine hemopoietic colony formation by human IL-6 // J. Immunol., 1988, 140: 3040−3044.
  556. Wong G.H.W., Goeddel D.V. Tumor necrosis factor alpha and beta inhibit virus replication and synergize with interferons // Nature (Lond.), 1986, 323: 819.
  557. Wood K.M., Cadogan M.D., Ramshaw A.L., Parums D.V. The distribution of adhesion molecules in human atherosclerosis. // Immunology, 1993,22: 437−444.
  558. Wright H.P. Endothelial turnover // In: «Vascular factors and thrombosis», F.K.Shattauer Verlag, Stuttgart, 1970, p. 79−84.
  559. Wright H.P. Mitosis patterns in aortic endothelium // Atherosclerosis, 1972, 15: 93 100.
  560. Wu L., Satoh Т., Tokunaga O. Formation of multinucleated variant endothelial cells in vitro and investigation of MVECs' features. Fukuoka Igaku Zasshi, 1999, 90: 377 391.
  561. WuDunn D., Spear P.G. Initial interaction of herpes simplex virus with cells is binding to heparan sulphate // J. Virol., 1989, 63: 52−58.
  562. Yabkowitz R., Dixit V.M., Guo N., et al. Activated T-cell adhesion to thrombospondin is mediated by the cuPi (VLA-4) and a5pi (VLA-5) integrins // J. Immunol., 1993, 151: 149−158.
  563. Yachnin S., Streuhl R.A., Gordon L.I., Hsu R.S. Alteration of peripheral blood cell membrane functions and morphology by oxygenated sterols. A membrane insertion hypothesis. // Curr. Top. Hemathol., 1979,2: 245−249.
  564. Yamamura M., Uyemura K., Deans R.J., et al. Defining protective responses to pathogens: cytokine profiles in leprosy lesions // Science, 1991,254: 277−279.
  565. Yamasaki K., Taga Т., Hirata Y., et al. Cloning and expression of the human interleukin 6 (BSF-2/IFN-P2) receptors // Science, 1988, 241: 825−828.
  566. Yang E.Y., Moses H.L. Transforming growth factor pi-induced changes in cell migration, proliferation, and angiogenesis in the chicken chorioallantoic membrane // J. Cell Biol., 1990, 111:731−741.
  567. Yla-Herttuala S., Palinski W., Rosenfeld M.E., et al. Evidence for the presence of oxidatively modified low density lipoproteins in atherosclerotic lesions of rabbit and man // J. Clin. Invest., 1989,84: 1086−1095.
  568. Yoshimura Т., Matsushima K., Tanaka S., Robinson E., et al. Purification of a human monocyte-derived neutrophil chemotactic factor that has peptide sequence similarity to other host defense cytokines // Proc. Natl. Acad. Sci. USA, 1987,84: 9233.
  569. Zaikina O.E., Dolgov V.V., Ivanov V.N., et al. Quantitative SEM analysis of injury to the endothelium of rabbit aorta and carotid artery during experimental atherosclerosis // Atherosclerosis, 1982,41: 141−154.
  570. Zhang Y., Lin J.X., Vilcek J. Synthesis of interleukin 6 (interferon p2/B cell stimulatory factor 2) in human fibroblasts is triggered by an increase in intracellular cyclic AMP//J. Biol. Chem., 1988, 263: 6177−6182.
  571. Zilberstein A., Ruggieri R., Korn J.H., Revel M. Structure and expression of cDNA and genes for human interferon-p2, a distinct species inducible by growth-stimulatory cytokines // EMBO J., 1988, 5: 2529−2537.
  572. Zimmerman G.A., Mclntyre T.M., Mehra M., Prescott S.M. Endothelial cell-associated platelet-activating factor: a novel mechanism for signaling intercellular adhesion // J. Cell Biol., 1990, 110: 529−540.
  573. Zimmerman G.A., Prescott S.M., Mclntyre T.M. Endothelial cell interactions with granulocytes: tethering and signaling molecules // Immunol. Today, 1992,13: 93−100.
  574. Zoon K.C., Miller D., Bekisz J., et al. Purification and characterization of multiple components of human lymphoblastoid interferon alpha // J. Biol. Chem., 1992, 267: 15 210−15 216.
  575. Zucali J.R., et al. Interleukin 1 stimulates fibroblasts to produce granulocyte-macrophage colony-stimulating activity and prostaglandin E2 // J. Clin. Invest., 1986,11: 1857−1863.
Заполнить форму текущей работой

Пора сдавать?