Помощь в учёбе, очень быстро...
Работаем вместе до победы

Биолюминесцентные системы почвенных энхитреид (Annelida: clitellata: oligochaeta: enchytraeidae)

Диссертация: Биолюминесцентные системы почвенных энхитреид (Annelida: clitellata: oligochaeta: enchytraeidae)
ДиссертацияПомощь в написанииУзнать стоимостьмоей работы

В данной работе впервые исследованы светящиеся почвенные энхитреиды, обнаруженные в Сибири. Сделано полное описание внешнего и внутреннего строения нового вида этих червей, получившего название Fridericia heliota. Основные характеристики взрослой особи: небольшие размеры (20×0.5 мм), число сегментов 50−58, прямые щетинки по 1−2(3) в пучке, эпидермальные железы в 4−5 рядов на каждом сегменте… Читать ещё >

Содержание

  • ГЛАВА 1. ЛЮМИНЕСЦЕНЦИЯ НАЗЕМНЫХ ОРГАНИЗМОВ
    • 1. 1. Типы хемилюминесцентных реакций
    • 1. 2. Бактериальная люминесценция
    • 1. 3. Люминесценция червей
      • 1. 3. 1. Светящиеся полихеты
      • 1. 3. 2. Люминесцентные олигохеты
        • 1. 3. 2. 1. История вопроса
        • 1. 3. 2. 2. Таксономия люминесцентных видов олигохет
        • 1. 3. 2. 3. Исследования люминесценции олигохет
        • 1. 3. 2. 4. Люминесценция Diplocardia longa
    • 1. 4. Светящиеся многоножки
    • 1. 5. Люминесценция насекомых
      • 1. 5. 1. Двукрылые семейства Mycetophilidae
      • 1. 5. 2. Жуки семейства Lampyridae
  • ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЙ
  • ГЛАВА 3. ОПИСАНИЕ НОВЫХ ВИДОВ СВЕТЯЩИХСЯ ЭНХИТРЕИД
    • 3. 1. Географическое распределение
    • 3. 2. Fridericia heliota: внешний вид и внутренние органы
      • 3. 2. 1. Классификационные замечания
      • 3. 2. 2. Локализация люминесцентной системы F. heliota
    • 3. 3. Henlea sp. описание вида, двойственность локализации люминесцентной системы
  • ГЛАВА 4. ИССЛЕДОВАНИЕ ЛЮМИНЕСЦЕНЦИИ ЭНХИТРЕИД
    • 4. 1. Особенности люминесценции in vivo, спектры
    • 4. 2. Определение компонентов люминесцентной системы F. heliota 4.2.1. Разделение системы на люциферазу и люциферин
      • 4. 2. 2. Магний- активатор люциферазы F. heliota
      • 4. 2. 3. АТФ — косубстрат люциферазы F. heliota
      • 4. 2. 4. Люциферин F. heliota
    • 4. 3. Компоненты люминесцентной системы Henlea sp
    • 4. 4. Оптимальные условия реакции люминесценции F. heliota in vitro
    • 4. 5. Влияние рН и температуры на люминесценцию
    • F. heliota и Henlea sp
  • ГЛАВА 5. ПОЛУЧЕНИЕ ЧАСТИЧНО-ОЧИЩЕННЫХ ПРЕПАРАТОВ ЛЮЦИФЕРАЗЫ И ЛЮЦИФЕРИНА F. HELIOTA И ИЗУЧЕНИЕ ИХ СВОЙСТВ
    • 5. 1. Метод экспресс-очистки люциферазы
    • 5. 2. Динамика люминесценции F. heliota в условиях недостатка люциферина
    • 5. 3. Перекрестные реакции
  • ГЛАВА 6. ВЛИЯНИЕ ИОНОВ НА ЛЮМИНЕСЦЕНЦИЮ F. HELIOTA
    • I. N VITRO
      • 6. 1. Эффект действия катионов двухвалентных металлов
      • 6. 2. Влияние анионов и детергентов
      • 6. 3. Демонстрация применения тест-системы F. heliota

Биолюминесцентные системы почвенных энхитреид (Annelida: clitellata: oligochaeta: enchytraeidae) (реферат, курсовая, диплом, контрольная)

Феномен биолюминесценции с давних пор привлекал внимание исследователей. Период разрозненных описаний сменился систематическими исследованиями. Накапливались знания по экологии и физиологии разнообразных светящихся организмов. Огромное количество работ посвящено изучению биохимических механизмов люминесценции. Развитие молекулярной биологии и генной инженерии в последние годы дало новый импульс в исследовании взаимосвязи между структурой белка и выполняемой им специализированной функцией. Высокая специфичность люцифераз к субстратам, прямая пропорциональность между интенсивностью люминесценции и концентрацией компонентов реакции, высокий квантовый выход позволяют создавать на основе люциферин-люциферазных систем высокочувствительные аналитические методы для использования в науке, промышленности и медицине.

Актуальность работы. Открытие и исследование новых люминесцентных систем, выяснение химической природы их структурных и регуляторных компонентов имеют большое значение для понимания механизмов преобразования энергии химических связей в кванты света, что является одной из фундаментальных задач биофизики. В биологии такие исследования помогают полнее проследить эволюционные пути, а также приблизиться к разгадке возникновения и значения люминесценции для биохимии и этиологии живых организмов. С практической точки зрения, каждое такое открытие расширяет спектр анализируемых веществ, приводит к разработке новых методов мониторинга окружающей среды, технологических и биологических процессов. Современная биотехнология получения рекомбинантных белков ускоряет путь от обнаружения нового светящегося организма до создания аналитических методов на основе его специфической люминесцентной системы.

Разработанность конкретной проблемы. К настоящему времени в разной степени изучены люминесцентные системы бактерий, медуз, рачков, полихет, светляков и др. Из всего класса олигохет довольно хорошо исследована только люминесценция Diplocardia longa, субтропического представителя семейства мегасколецид. Единичные наблюдения свечения энхитреид, сделанные около ста лет назад, впоследствии не получили подтверждения, и этих червей исключили из современной классификации светящихся организмов.

Цель работы — исследование биолюминесцентной системы неизвестных почвенных энхитреид, обнаруженных в Сибири. Задачи исследования:

1. Определить видовую принадлежность найденных червей.

2. Исследовать параметры биолюминесценции in vivo.

3. Установить тип и структурно-функциональную организацию люминесцентной системы энхитреид.

4. Реконструировать люминесцентную систему и определить оптимальные условия проведения реакции in vitro.

5. Исследовать физико-химические свойства компонентов люминесцентной системы.

6. Изучить возможности использования люминесцентной системы энхитреид в аналитических целях.

В ходе исследования открыто два новых вида кольчатых червей, принадлежащих к классу олигохет, семейству энхитреид. Показано, что, несмотря на таксономическую близость Fridericia heliota и Henlea sp., локализация и параметры их люминесценции in vivo различны. Установлено, что люминесцентные системы данных энхитреид отличаются от всех известных люминесцентных систем олигохет. Для люминесцентной реакции Henlea sp. необходимы 4 компонента: люцифераза, люциферин, кальций, кислорода люминесцентная система F. heliota включает 5 компонентов: люциферазу, люциферин, АТФ, магний и кислород. Установлены оптимальные значения рН, температуры, концентрации буфера, экзогенных металлов, БСА и Тритона XI00 для реакции in vitro. Изучено воздействие на люминесценцию системы F. heliota катионов двухвалентных металлов, различных анионов и алифатических соединений. Предложен экспресс-метод очистки люциферазы и люциферина F. heliota, определены их молекулярные массы.

Основные положения, выносимые на защиту:

1. Впервые описанные почвенные энхитреиды Fridericia heliota и Henlea sp. являются новой группой биолюминесцентных организмов.

2. Особенности структурно-функциональной организации металл-зависимых люциферин-люциферазных систем энхитреид определяют их уникальность среди известных люминесцентных систем.

3. Чувствительность люциферазы F. heliota к АТФ, его аналогам и различным ионам позволяет использовать тест-систему этих энхитреид в различных областях науки и практики.

Публикации. По теме диссертации опубликовано шесть работ [1−6]. Апробация работы. Результаты диссертационной работы докладывались и обсуждались на семинарах Института биофизики СО РАН, Сибирского Технологического Университета, Института леса СО РАН, Красноярского государственного Университета.

Объем и структура диссертации. Диссертация состоит из введения, 6 глав с выводами, заключения, основных выводов и списка цитируемой литературы из 132 наименований. Материал диссертации изложен на 124 страницах машинописного текста, включает 47 рисунков.

ОСНОВНЫЕ ВЫВОДЫ.

1. Обнаруженные в Сибири светящиеся черви являются представителями двух новых видов почвенных энхитреид: Fridericia heliota и Henlea sp. На их примере впервые доказан факт люминесценции представителей данного семейства кольчатых червей.

2. Люминесцентные системы F. heliota и Henlea sp. принадлежат к разным типам, имеют разную локализацию и спектральные характеристики in vivo, а также различные рН и-оптимумы. Их структурно-функциональные отличия от известных люминесцентных систем земляных червей опровергают постулат о единой природе люминесценции олигохет. Металл-зависимые люциферазы олигохет выделены в особую группу люминесцентных ферментов.

3. Люминесцентная система Henlea sp. включает четыре компонента: люциферазу (гомодимер с молекулярной массой 72 кДа), люциферин, ион кальция — активатор люциферазы и кислород.

4. Для люминесцентной реакции F. heliota необходимо пять компонентов: люцифераза, люциферин, АТФ — косубстрат люциферазы, ион магния — активатор люциферазы и кислород. По набору компонентов данная система похожа на АТФ-зависимые системы организмов из других таксономических групп: многоножек Luminodesmus sequoia, грибных мушек Arachnocampa flava и всех видов светляков.

5. Предложенный метод экспресс-очистки компонентов люминесцентной системы F. heliota позволяет в течение шести часов за два хроматографических этапа повысить специфическую активность люциферазы более чем в 70 раз. Молекулярная масса люциферазы F. heliota — 60 кДа (возможно, гомодимер), люциферина — 0.5−0.7 кДа.

6. Люцифераза F. heliota проявляет высокую чувствительность к АТФ, его аналогам, катионам двухвалентных металлов, различным анионам. Тест-систему F. heliota можно применять в аналитических целях для детекции этих реагентов.

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

.

В данной работе впервые исследованы светящиеся почвенные энхитреиды, обнаруженные в Сибири. Сделано полное описание внешнего и внутреннего строения нового вида этих червей, получившего название Fridericia heliota. Основные характеристики взрослой особи: небольшие размеры (20×0.5 мм), число сегментов 50−58, прямые щетинки по 1−2(3) в пучке, эпидермальные железы в 4−5 рядов на каждом сегменте, трапециевидный головной мозг, пептонефридии коротковетвистые, ампулы парных семяприемников с двумя большими удлиненными дивертикулами, похожими на уши. Слово «heliota» образовано от греческих helios — Солнце и otos — ухо. Новый вид включен в таксономию энхитреид, образцы F. heliota размещены в коллекциях музеев Рима, Стокгольма и Москвы.

Подтверждение заявленной новизны второго вида, принадлежащего к роду Henlea, еще требует времени. Однако с полной уверенностью можно сказать, что сибирская Henlea sp. — неизвестный ранее вид светящихся энхитреид.

Около ста лет в мире не было никаких сообщений о люминесценции энхитреид. В 1982 году этих кольчатых червей исключили из классификации светящихся организмов [901]. Сейчас, после установления нами двух достоверных фактов люминесценции, энхитреиды займут свое законное место в этом списке. Люминесценция в роду Fridericia зафиксирована впервые. Ввиду того, что упоминавшиеся в начале XX века светящиеся Henlea ventriculosa (=Enchytraeus albidus) [1594] и Henlea (=Michaelseniella) nasuta [1597] имели неясное таксономическое положение и по описанию не похожи на исследуемую нами Henlea sp., рискнем заявить, что и в роду Henlea нами впервые установлен факт люминесценции.

Источник свечения F. heliota находится в области эпидермальных железистых клеток, целомическая жидкость этих энхитреид не светится.

Показать весь текст

Список литературы

  1. Н. Т., Петушков В. Н., Родионова Н. С. Светящиеся почвенные энхитреиды (Oligochaeta, Enchytraeidae) // Докл. АН СССР. — 1990. — Т. 310. — N 2. — С. 496- 498.
  2. В. Н., Родионова Н. С., Пуртов К. В., Бондарь В. С. Люминесцентная система почвенных энхитреид Henlea sp. (Annelida: Clitellata: Oligochaeta: Enchytraeidae) Н ДАН. 2002. — Т. 385. — N 3. -С. 416−418.
  3. Н. С., Бондарь В. С., Петушков В. Н. Са активатор люминесцентной системы земляных червей Henlea sp. (Annelida: Clitellata: Oligochaeta: Enchytraeidae) II ДАН. — 2002. — Т. 386. — N 2. -С. 270−273.
  4. В. H., Родионова Н. С., Бондарь В. С. Исследование люминесцентной системы почвенных энхитреид Fridericia heliota (Annelida: Clitellata: Oligochaeta: Enchytraeidae) II ДАН. 2003. — Т. 391.-N2.-С. 269−272.
  5. H. С., Бондарь В. С., Петушков В. Н. АТФ косубстрат люциферазы земляных червей Fridericia heliota (Annelida: Clitellata: Oligochaeta: Enchytraeidae) // ДАН. — 2003. — Т. 392. — N 2. — С. 264 266.
  6. Roda A., Guardigli M., Michelini E., Mirasoli M., Pasini P. Analytical Bioluminescence and Chemiluminescence // Analytical Chemistry. Nov. 1 -2003.-P. 463−470.
  7. Shimomura О., Johnson F. H. Mechanism of the luminescent oxidation of Cypridina luciferin // Biochem. Biophys. Res. Comm. 1971. — V. 44. — P. 340−346.
  8. Viviani V. R. The origin, diversity, and structure function relationships of insect luciferases // Cell. Mol. Life Sci. 2002. — V. 59 — N 11. — P. 18 331 850.
  9. Cormier M. J., Lee J., Wampler J. E. Bioluminescence: recent advances. // Ann. Rev. Biochem. 1975. — V. 44. — P. 255−272.
  10. Campbell A. K. Chemiluminescence: principles and applications in biology and medicine / VCH / Horwood, Chichester. — 1988.
  11. Harvey E. N. Bioluminescence / N.Y. Acad.Press. 1952. — 649 p.
  12. Rees J.-F., De Wergifosse В., Noiset O., Dubuisson M., Janssens В., Thompson E.M. The origins of marine bioluminescence: turning oxygen defense mechanisms into deep-sea communication tools // Journal of Experimental Biology. 1998.-V. 201.-P. 1211−1221.
  13. Cormier M. J. Comparative biochemistry of animal systems // Bioluminescence in Action. / London. Academic Press. 1978. — P. 75 108.
  14. Roda A., Pasini P., Guardigli M., Baraldini M., Musiani M., Mirasoli M. Bio- and Chemiluminescence in bioanalysis // Fresenius J. Anal. Chem. -2000.-V. 366.-P. 752−759.
  15. Hastings J. W, Johnson С. H. Bioluminescence and chemiluminescence // Methods Enzymol. 2003. — V. 360. — P. 75−104.
  16. Inouye S., Watanabe K., Nakamura H., Shimomura O. Secretional luciferase of the luminous shrimp Oplophorus gracilirostris: cDNA cloning of a novel imidazopyrazinone luciferase // FEBS Letters. 2000. -V.481.-P. 19−25.
  17. Johnson F. H., Shimomura O. Bacterial and other luciferins // Bio Science. 1975. — V. 25. — N 11. — P. 718−722.
  18. Tu S.- С., Mager H. I. X. Biochemistry bacterial bioluminescence // Photochem. Photobiol. 1995. — V. 62. -N 4. — P. 615−624.
  19. Wilson Т., Hastings J. W. Bioluminescence // Ann. Rev. Cell. Dev. Biol. -1998.-V. 14.-P. 197−230.
  20. P. И., Гительзон И. И. Светящиеся бактерии / М. Наука. — 1975.- 108 с.
  21. Светящиеся бактерии / под ред. Кондратьевой Е. Н. / Новосибирск, Наука.-1984.-280 с.
  22. Mager Н. I. X., Tu S.- С. Chemical aspects of bioluminescence // Photochem. Photobiol. 1995. — V. 62. -N 4. — P. 607−614.
  23. J. А. С. Luminescence in polynoid worms // J. Mar. Biol. Assoc. UK. 1953. -V. 32. — P. 65−84.
  24. Herring P. J. Systematic distribution of bioluminescence in living organisms // J. Biolum. Chemilum. 1987. — V. 1. — P. 147−163.
  25. Dubois R. Fonction photogenique des pyrophores // C. R. Soc. Biol. -1885.-V. 37.-P. 559−562.
  26. Dubois R. Note sur la fonction photogenique chez les pholades // C. R. Soc. Biol.-1887.-V. 39.-P. 564−566.
  27. Shimomura O., Beers J. R., Johnson F. H. The cyanide activation of Odontosyllis luminescence // J. Cell Physiol. 1964. — V. 64. — P. 15−21.
  28. Nicol J. A. C. Studies on Chaetopterus variopedatus (Renier). II Nervous control of light production // J. Mar. Biol. Assoc. 1952. — V. 30. — P. 433 452.
  29. Nicol J. A. C. Studies on Chaetopterus variopedatus (Renier). Ill Factors affecting the light response // J. Mar. Biol. Assoc. 1952. — V. 31. -P. 113−144.
  30. Martin N., Anctil M. Luminescence control in the tube-worm Chaetopterus variopedatus: role of nerve cord and photogenic gland // Biol. Bull. 1984. — V. 166. — P. 583−593.
  31. Shimomura O., Johnson F. H. Partial purification and properties of the Chaetopterus luminescence system / Bioluminescence in Progress. 1966. -P. 495−521.
  32. Bassot J. M., Nicolas G. An optional dyadic junctional complex revealed by fast-freeze fixation in the bioluminescent system of the scale worm // J. Cell Biol. — 1987. — V. 105. — P. 2245−2256.
  33. Bassot J.- M. A transient intracellular coupling explains the facilitation of responses in the bioluminescent system of scale worms // J. Cell Biol. -1987.-V. 105.-P. 2235−2243.
  34. Fresneau C., Arrio В., Lecuyer В., Dupaix A., Lescure N., Volfin P. The fluorescent product of scaleworm bioluminescent reaction: an in vitro study // Photochem. Photobiol. 1984. — V. 39. — N 2. — P. 255−261.
  35. Nicolas G., Bassot J. M., Shimomura O. Polynoidin: a membrane photoprotein isolated from the bioluminescent system of scale-worms // Photochem. Photobiol. — 1982. — V. 35. — P. 201−207
  36. Vejdovsky F. System und Morphologie der Oligochaeten / Prague, Franz. Rivac.- 1884.
  37. Skowron S. The luminous material of Microscolex phosphoreus // Dug. Biol. Bull. -1928.-V. 54. P. 191−195.
  38. Cohn F. Leuchtende Regenwurmer. Zeitschrift wiss // Zool. 1873.
  39. Atkinson A. A remarkable case of phosphorescence in an earthworm // The American Naturalist. 1887. — V. 21. — P. 773−774.
  40. Giard G. Sur la distribution geographique du Phot. Ph. Duges // C.-Rend. Soc. De Biol. 1891. — V. 9. — N 3. — P. 252.
  41. Friend H. Luminous worms // Nature. 1919. — V. 103. — N 2597. — P. 446.
  42. Friend H. Luminous Earthworms // Nature. 1893. — V. 48. — P. 462.
  43. Beddard K. A note upon phosphorescent earthworms // Nature. 1899. -V. 60.-P. 52.
  44. Benham W. B. Phosphorescent earthworms // Nature (Lond.). 1899. — V. 60.-P. 591.
  45. Pierantoni U. Gli animali luminosi / Milano, Sonzogno. 1922. — 52 p.
  46. Secchi P. A. Nouvelles observations // Ann. Sci. Nat. 1872. — V. 16. -68.
  47. Eversmann E. Lumbricus noctilucus II Utshen. Zapiski. Kazan. Univ. -1838.-P. 156−157.
  48. Owsiannikow P. Uber das Leuchten der Larven von Lampyris noctiluca II Bull. Acad. imp. Sci. St. Petersburg. 1864. — V. 7. — P. 55−61.
  49. А. Случай свечения наземных Oligochaeta II Труды Императорскаго С. Петербургскаго общества естествоиспытателей. -1909. -Т.40. -N 1.-Р. 103−109.
  50. В. А. / Зоология беспозвоночных / М., Высшая школа. 1981. — 606 с.
  51. Cormier М. J. Luminescence in Annelids // Chemica Zoiology. / Annelida Echiura and Sipuncula. / N. Y., London, Academic Press. 1969. — V. 4. -P. 467−479.
  52. Herring P. J. Appendix: a classification of luminous organisms / Bioluminescence in Action. / London, N.Y., San Francisco, Academic Press.- 1978b.-P. 461−476.
  53. Herring P. J. Bioluminescent of invertebrates other than insect / Bioluminescence in Action. / London, N. Y., San Francisco, Academic Press. 1978 a. — P. 199−240.
  54. Wampler J. E., Jamieson B. G. M. Earthworm bioluminescence: comparative physiology and biochemistry // Сотр. Biochem. Physiol. -1980.-V. 66 В.-P. 43−50.
  55. G. E. / A monograph of the acantodriline earthworms of South Africa. / Cambridge, Heffer. 1937.
  56. Wampler J. E. The bioluminescence system of Microscolex phosphoreus, and its similarities to those of other bioluminescent earthworms (Oligochaeta) II Сотр. Biochem. Physiol. 1982. — V. 71 A. — N 4. — P. 599−604.
  57. Wampler J. E., Jamieson B. G. M. Cell bound bioluminescence from Pontodrilus bermudensis, and its similarities to other earthworm bioluminescence // Сотр. Biochem. Physiol. 1986. — V. 84 A. — N 1. — P. 81−87.
  58. Rota E., Healy B. A taxonomic study of some Swedish Enchytraeidae (Oligochaeta), with description of four new species and notes on the genus Fridericia I I J. Natural History. 1999. — V. 33. — P. 29−64.
  59. Jamieson B. Bioluminescent Australian earthworms, I. Digaster keasti sp. nov. (Megascolecidae), the first record of an oligochaete from Fraser Island // Proc. R. Soc. Qd. 1977. — V. 88. — P. 83−88.
  60. Issatschenko В. Erforschung der bakterielle Leuchten des Chironomus (.Diptera) // Bull. Jard. bot. St.-Petersb. 1911. — V. 11. — P. 31 -49.
  61. Rudie N. G., Wampler J .E. Earthworm bioluminescence: characterization of the luminescent cell from Diplocardia longa II Сотр. Biochem. Physiol. 1978. — V. 59 A. — P. 1−8.
  62. Bellisario R., Spencer Т. E., Cormier M. J. Isolation and properties of luciferase, a non-heme peroxidase from the bioluminescent earthworm, Diplocardia longa И Biochem. 1972. — V. l 1. — N 12. — P. 2256−2266.
  63. Baruah G. D. Emission spectrum of p-luciferin and its comparison with the bioluminescence spectra of Fireflies and earthworms // Indian J. Pure & Applied Phys. 1986. — V. 24. — P. 47−49.
  64. Baruah R. K., Baruah G. D. A comparison of the in vivo bioluminescence emission of fireflies and earthworms // Indian J. Phys. 1984. — V. 58 B. -P. 362−368.
  65. Wenig K. Bioluminescence of Eusenia submontana II Vestn. Cesk. Zool. Spolec. 1946. — V. 10. — P. 293.
  66. Johnson F. H., Shimomura O., Haneda, Y. / Bioluminescence in Progress. / Princeton University Press, Princeton, New Jersey. 1966. — P. 385−390.
  67. Wampler J. E., Mulkerrin M. G., Rich E.S. J. Instrumentation and techniques for analysis of hydrogen peroxide-producing reactions involving earthworm {Diplocardia longa) bioluminescence // Clin. Chem. 1979. — V. 25. — N 9. — P. 1628−1634.
  68. Rudie N. G., Ohtsuka H., Wampler J. E. Purification and properties of luciferin from the bioluminescent earthworm Diplocardia longa II Photochem. Photobiol. 1976. — V. 23. -N 1. — P. 71−73.
  69. Rudie N. G., Mulkerrin M. G., Wampler J. E. Earthworm bioluminescence: characterization of high specific activity Diplocardia longa luciferase and the reaction it catalyzes // Biochem. 1981. — V. 20. -N 2. — P. 344−350.
  70. Ohtsuka H., Rudie N. E., Wampler J. E. Structural identification and synthesis of luciferin from the bioluminescent earthworm, Diplocardia longa II Biochem. 1976. — V. 15. — N 5. — P. 1001 -1004.
  71. Mulkerrin M. G, Wampler J. E. Assaying hydrogen peroxide using the earthworm bioluminescence system // Methods in Enzymology. 1978. -V. 57.-P. 375−381.
  72. Rudie N. G., Wampler J. E. A unique aldehyde chemiluminescence involving peroxide and copper I in acidic DMSO // Photochem. Photobiol. 1979. — V. 29.-P. 171−174.
  73. Hastings J. W., Davenport D. The luminescence of the millipede, Luminodesmus sequoiae II Biol. Bull. 1957. — V. 113. — P. 120−128.
  74. Shimomura O. A new type of ATP-activated bioluminescent system in the millipede Luminodesmus sequoiae II FEBS Letters. — 1981. — V. 128. — N 2. P. 242−244.
  75. Shimomura O. Porphyrin chromophore in Luminodesmus photoprotein // Сотр. Biochem. Physiol. 1984. — V. 79 B. — N 4. — P. 565−567.
  76. Shimomura O. Chlorophyl-derives bile pigment in bioluminescence euphausiids И FEBS Letters. 1980. — V. 116. — P. 203−206.
  77. M., Kanakubo A., Suwan S., Koga K., Isobe M., Shimomura O. 7,8-dihydropterin-6-carboxylic acid as light emitter of luminous Millipede, Luminodesmus sequoiae II Bioorganic. Med. Chem. Letters. 2001. — V. 11.-P. 1037−1040.
  78. Wood K.V. The chemical mechanism and evolutionary development of of beetle bioluminescence // Photochem. Photobiol. 1995. — V. 62. — N 4. -P. 662−673.
  79. Stolz U., Velez S., Wood K. W., Wood M., Feder J. L. Darwinian natural selection for orange bioluminescent color in a Jamaican click beetle // PNAS — 2003.- V. 100.-P. 14 955−14 959.
  80. Viviani V., Uchida A., Suenaga N., Ryufuku M., Ohmiya Y. Thr226 is a key residue for bioluminescence spectra determination in beetle luciferases // BBRC. 2001. — V. 280. — P. 1286−1291.
  81. Viviani V.R., Ohmiya Y. Bioluminescence color determinants of Phrixothrix railroad-worm luciferases: chimeric luciferases, site-directed mutagenesis of Arg 215 and guanidine effect // Photochem. Photobiol. -2000. V. 72. — N 2. — P. 267−271.
  82. Viviani V. R., Bechara E.J.H., Ohmiya Y. Cloning, sequence analysis, and expression of active Phrixothrix railroad-worms luciferases: relationship between bioluminescence spectra and primary structures // Biochemistry.- 1999.-V. 38.-P. 8271−8279.
  83. Lee J. Bioluminescence of the Australian glow-worm, Arachnocampa richardsae Harrison // Photochem. Photobiol. 1976. — V. 24. — P. 279 285.
  84. Viviani V. R., Hastings J. W., Wilson T. Two bioluminescent diptera: the North American Orfelia fultoni and the Australian Arachnocampa flava. Similar niche, different bioluminescence systems // Photochem. Photobiol.- 2002. V. 75. — N 1. — P. 22−27.
  85. Fulton B.B. A luminous fly larva with spider traits // Ann. Entomol. Soc. Am. 1941. — V. 34. — P. 289−302.
  86. Wood K.V. Evolution of bioluminescence in insects / Bioluminescence and Chemiluminescence: Status Report. 1993. — P. 104−108.
  87. Ugarova N. N. Luciferase of Luciola mingrelica fireflies. Kinetics and regulation mechanism // J. Biolum. Chemilum. 1989. — V. 4. — P. 406 418.
  88. Sala-Newby G. В., Thomson С. M., Campbell A. K. Sequence and biochemical similarities between the luciferase of the glow-worm Lampyris noctiluca and the firefly Photinus pyralis II Biochemical J. — 1996.-V. 313.-P. 761−767.
  89. Hannah R. R., Mc Caslin D. R., Wood K. Evidence for molecular aggregation of beetle luciferases / Bioluminescence and Chemiluminescence: Perspectives for the 21st Century. 1999. — P. 361 -364.
  90. Л. Ю., Беляева Е. И., Угарова Н. Н. Субъединичные взаимодействия в люциферазе светляков Luciola mingrelica. Их роль в проявлении активности фермента и процессе термоинактивации // Биохимия. 1982. — Т. 47. — Вып. 5. -С. 760−766.
  91. L. Н., Moose J. Е., Hilderman R. Н. Characterization of the interaction of P 1, P 4 -diadenosine 5 0 -tetraphosphate with luciferase // Biochem. Biophys. Res. Com. 2004. — V. 315. — P. 756−762.
  92. Min K. L., Steghens J. P. ADP is produced by firefly luciferase but its synthesis is independent of the light emitting properties // Biochimie. -2001.-V. 83.-P. 523−528.
  93. H. H., Бровко Л. Ю. Биолюминесценция и биолюминесцентный анализ / М., МГУ. 1981. — 138с.
  94. McElroy W. D., DeLuca M. Chemical and enzymatic mechanisms of firefly luminescence / Chemilum. Biolum. / N.Y., Plenum Press. P. 285 308.
  95. H. Ю., Угарова H. H. Ингибирование люциферазы из светляка Luciola mingrelica аналогами АТФ // Биохимия. 1982. — Т. 47.-Вып. 8, С. 1342−1347.
  96. B.R., Southworth Т. L., Murtiashaw М. Н., Boije Н., Fleet S. Е. A mutagenesis study of the putative luciferin binding site residues of firefly luciferase // Biochem. 2003. — V. 42. — P. 10 429−10 436.
  97. Strehler B. L., Totter J. R. Firefly luminescence in the study of energy transfer mechanisms. I. Substrate and enzyme determination // Arch. Biochem. Biophys. 1952. — V. 40. — P. 28−41.
  98. Fraga H.,.Esteves da Silva J. C. G, Fontes R. Identification of luciferyl adenylate and luciferyl coenzyme A synthesized by firefly luciferase // Chem. Biochem. 2004. — V. 5. — P. 110−115.
  99. McElroy W. D., DeLuca M. Chemistry of firefly bioluminescence / Bioluminescence in Action. / N. Y., Academic Press. 1978. — P. 109— 127.
  100. De Luca M., Mc Elroy W. D. Kinetics of firefly luciferase catalyzed reactions // Biochemistry. 1974. — V. 13. — P. 921−925.
  101. Branchini B. R., Magyar R. A., Murtiashaw M. H., Anderson S. M., Zimmer M. Site-directed mutagenesis of histidine 245 in firefly luciferase: a proposed model of the active site // Biochem. 1998. — V. 37. — P. 15 311−15 319.
  102. Branchini В. R., Magyar R. A., Murtiashaw M. H., Portier N. C. The role of active site residue arginine 218 in firefly luciferase bioluminescence // Biochem. 2001. — V. 40. — P. 2410−2418.
  103. Seliger H. H., Mc Elroy W. D. Spectral emission and quantum yield of firefly bioluminescence // Arch. Biochem. Biophys. 1960. — V. 88. — P. 136−141.
  104. Л. Ю., Угарова Н. Н. Кинетика и механизм инактивации и реактивации иммобилизованной люциферазы светляков Luciola mingrelica, и роль сульфгидрильных групп в этих процессах // Биохимия. 1980. — Т. 45. — Вып. 5. — С. 794−801.
  105. Thore A. Technical aspects of the bioluminescent firefly luciferase assay of ATP // Science Tools. 1979. — V. 26. — P. 30−34.
  106. Nielsen C.O., Christensen B. The Enchytraeidae. Critical revision and taxonomy of European species. (Studies on enchytraeidae VII) // Natura Jutlandica. 1959. -V. 8−9. — P. 160.
  107. В. Новый вид Henlea из окрестностей города Иркутска: Henlea irkutensis п. sp. II Известия Биолого-Географического НИИ при Государственном Иркутском Университете. 1929. — Т. 4. — Вып. 2. -С. 99−129.
  108. А. М. Purification and properties of Pholas dactylus luciferin and luciferase // Methods in Enzymology. 1978. — V. 57. — P. 385−400.
  109. Д. E. / Биохимия / M., Наука. 1980. — Т. 1.- 407 с.
  110. Bjerrum J., Schwarzenbach G., Sillen L. G. Stability constants. P. 1: Organic ligands // L. Chem. Soc. 1957.
  111. В.З. Роль металлов в каталитическом действии ферментов / Ферменты. / М., Наука. 1964. — С. 192 — 214.
  112. А. / Биохимия / М., Мир. 1974.- 957 с.
  113. Lynch R. V., Tsuji F. I., Donald D. H. Evidence for calcium requirements in the Cypridina bioluminescence reaction // BBRC. 1972. — V. 46. — N 4.-P. 1544−1550.
  114. Johnson F. H., Shimomura O. Introduction to the Cypridina system // Methods in Enzymology. 1978. — V. 57. — P. 331−364.
  115. Thompson E. M., Nagata S., Tsuji F. I. Vargula hilgendorfii luciferase: a secreted reporter enzyme for monitoring gene expression in mammalian cells // Gene. 1990. — V. 96. — P. 257−262.
  116. Rajgopal S., Vijayalakshmi M. A. Metal-ion mediated interaction of luciferase with tetraiodofluorescein // J. Chromatography. 1984. — V. 315.-P. 175−184.
  117. В., Уильяме X. Физическая химия для биологов / М., Мир. -1976.-600 с.
  118. Hastings J.W., Spudich J.A., Malnic G. The influence of aldehyde chain length on the relative quantum yield of the bioluminescent reaction of Achromobacter fischeri И J. Biol. Chem. 1963. — V. 238. — N 9. — P. 3100−3106.
  119. В. H., Кратасюк Г. А., Кратасюк В. А., Белобров П. И. Термоинактивация бактериальной люциферазы // Биохимия. — 1982. -Т. 47. Вып.11. — С. 1773−1777.
  120. Т. F., Baldwin Т. О. Reversible inhibition of the bacterial luciferase catalyzed bioluminescence reaction by aldehyde substrate: kinetic mechanism and ligand effects // Biochem. 1983. — V. 20. — N12. -P. 2838−2846.
  121. H. H., Филиппова H. Ю., Березин И. В. Ингибирование люциферазы светляков Luciola mingrelica неорганическими солями // Биохимия. 1981. — Т. 6. — N 5. — С. 851−858.
  122. А. Ф., Угарова Н. Н., Березин И. В. Люцифераза светляков как комплекс белка с липидами // ДАН СССР. 1986. — Т. 289. — N 1. -С. 231−233.
  123. Gerasimova М.А., Kudryasheva N.S. Effects of potassium halides on bacterial bioluminescence // J. Photochem. Photobiol. B: Biology. 2001. -V. 66.-P. 218−222.
  124. McGovern S. L., Helfand В. Т., Feng В., Shoichet В. K. A Specific mechanism of nonspecific inhibition // J. Med. Chem. 2003. — V. 46. -P. 4265−4272.
  125. Ryan A. J., Gray N. M., Lowe P. N., Chung C. Effect of detergent on «promiscuous» inhibitors // J. Med. Chem. 2003. — V. 46. — P. 34 483 451.
Заполнить форму текущей работой

Пора сдавать?